1
1
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
https://revistascientificas.uach.mx/index.php/tecnociencia
ISSN-e: 2683-3360
Artículo Científico
Efecto del KCl in vitro sobre la germinación,
morfología y contenido fitoquímico en plántulas de
Dasylirion sp.
In vitro effect of KCl on germination, morphology and phytochemical
content in Dasylirion sp. seedlings
*Correspondencia: Correo electrónico: jose.valero@uacj.mx (José Valero-Galván)
DOI: https://doi.org/10.54167/tch.v20i1.2311
Recibido: 30 de abril de 2026; Aceptado: 05 de agosto de 2026
Publicado por la Universidad Autónoma de Chihuahua, a través de la Dirección de Investigación y Posgrado.
Editora de Sección: Dra. Yolanda Salinas-Moreno
Resumen
La salinidad representa un factor limitante importante para la germinación y el establecimiento
temprano de especies vegetales en zonas áridas; sin embargo, el efecto del exceso de potasio ha sido
poco estudiado en Dasylirion sp. El objetivo de este estudio fue evaluar el efecto de diferentes
concentraciones de KCl in vitro sobre la germinación, crecimiento y estado fisiológico de plántulas.
Se emplearon tres concentraciones de KCl (0.06, 0.12 y 0.19 mM) y un tratamiento control, analizando
parámetros germinativos, biomasa, morfometría, contenido de pigmentos, compuestos fenólicos y
actividad antioxidante. Los resultados mostraron que el incremento en KCl redujo
significativamente el porcentaje, la velocidad y la eficiencia de germinación, y aumentó el tiempo
medio de germinación. Asimismo, se observó una disminución en la biomasa, el crecimiento y los
pigmentos fotosintéticos, así como una reducción en el contenido fenólico y la actividad
antioxidante. Estos resultados indican que el KCl induce alteraciones fisiológicas que afectan
procesos clave como la imbibición, el metabolismo energético y la integridad celular. En conclusión,
el KCl actúa como un factor de estrés iónico que impacta negativamente el establecimiento temprano
de Dasylirion sp., demostrando su alta sensibilidad bajo condiciones experimentales controladas.
Palabras clave: sotol, estrés salino, semillas, pigmentos, antioxidantes.
Raquel González-Fernández1 , Cristal Mora-Pacheco1, Miroslava Quiñonez-Martínez1 ,
José Valero-Galván¹*
1Departamento de Ciencias Químico Biológicas, Instituto de Ciencias Biomédicas, Universidad Autónoma de Ciudad
Juárez, Ciudad Juárez, Anillo envolvente del PRONAF y Estocolmo s/n, Ciudad Juárez, Chihuahua, 32310, México.
2
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
Abstract
Salinity is an important limiting factor for germination and early establishment of plant species in
arid environments; however, the effects of excess potassium remain poorly understood in Dasylirion
sp. The objective of this study was to evaluate the effect of different concentrations of KCl in vitro on
germination, growth, and physiological status of seedlings. Three KCl concentrations (0.06, 0.12, and
0.19 mM) and a control treatment were assessed, analyzing germination parameters, biomass,
morphometry, pigment content, phenolic compounds, and antioxidant activity. Results showed that
increasing KCl concentrations significantly reduced the percentage, rate, and efficiency of
germination, while increasing the average time for germination. Also, it was observed a reduction
in biomass, growth, and photosynthetic pigments, along with a decrease in phenolic content and
antioxidant activity. These results indicate that KCl induces physiological alterations affecting key
processes such as water uptake, energy metabolism, and cellular integrity. In conclusion, KCl acts as
an ionic stress factor that negatively impacts the early establishment of Dasylirion sp., demonstrating
its high sensitivity under controlled experimental conditions.
Keywords: sotol, salt stress, seeds, pigments, antioxidants.
1. Introducción
El género Dasylirion (Asparagaceae) destaca por presentar plantas perennes de crecimiento
lento que habitan regiones áridas y semiáridas del centro-norte de México y el sur de Estados Unidos
de América (Ruiz-Flores y Castro-Castro, 2024). Las especies del género presentan hojas alargadas,
rígidas y fibrosas, dispuestas en forma de roseta y provistas de márgenes espinosos que pueden
alcanzar hasta 1 m de longitud, el tallo central puede medir entre 1 y 1.5 m. El sistema reproductivo
es dioico y las plantas producen inflorescencias erectas de gran tamaño, con variaciones morfológicas
asociadas al sexo y a la especie (Ortiz et al., 2023). En México, Dasylirion se distribuye desde el centro
del país hasta la península de Baja California con presencia notable en los estados de Chihuahua,
Durango, Zacatecas, Nuevo León, San Luis Potosí y Coahuila (Ruiz-Flores y Castro-Castro, 2024).
En estas zonas, los ecosistemas se caracterizan por presentar temperaturas elevadas, baja
precipitación anual y suelos rocosos con escaso contenido de materia orgánica. Bajo estas
condiciones, este género ha desarrollado adaptaciones morfológicas y fisiológicas que favorecen su
desarrollo debido a que tiene un uso eficiente del agua que favorece su supervivencia en ambientes
de alta aridez (Ortiz et al., 2023).
El género Dasylirion presenta relevancia ecológica y valor etnobotánico. Las fibras de sus hojas se
han utilizado para elaborar cuerdas, cestas y tapetes, y existen registros de su uso alimenticio. Las
plantas de sotol se usan para producir sotol (bebida alcohólica) y cuenta con denominación de origen
en los estados de Chihuahua, Durango y Coahuila. Se estima que solo el estado de Chihuahua
concentra el 70 % de la producción nacional, con más de 250 productores y una producción anual
estimada en 520,000 L (Madrid-Solórzano et al., 2021). Asimismo, la valoración de residuos fibrosos
ricos en celulosa y lignina ha motivado su evaluación como combustible de segunda generación
(Benavides-Mendoza et al., 2023), y se han explorado compuestos como fructanos de inulina y
oligofructanos con potencial alimenticio (Sánchez-Madrigal, 2019). No obstante, diversos reportes
indican que la cadena productiva aún depende de poblaciones silvestres, lo que ha generado presión
sobre los recursos naturales y aumento en las distancias de recolección (Juárez-Morales et al., 2023).
3
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
En regiones áridas y semiáridas, la salinización de los suelos es una problemática creciente asociada
a la elevada evaporación, la limitada lixiviación y a prácticas de manejo que favorecen la
acumulación de sales (Stavi et al., 2021). A nivel global se estima que el 10.7 % de la superficie global
(1,381 millones de hectáreas), se encuentran afectadas por salinidad, mientras que alrededor del 10
% de las tierras agrícolas irrigadas presentan este problema (FAO, 2024). Asimismo, el 20 % y el 50
% de los suelos bajo riego presentan algún grado de salinización, particularmente en regiones áridas
donde la limitada lixiviación favorece la acumulación de sales (Nachshon, 2018; FAO, 2021). La
salinidad resulta particularmente crítica para los vegetales, debido a sus efectos negativos sobre la
germinación y el establecimiento temprano de las plántulas, derivados de la combinación de estrés
osmótico que reduce la imbibición y la expansión celular y estrés iónico, asociado a toxicidad
específica y desbalances nutricionales, además de inducir alteraciones en el metabolismo oxidativo
y la acumulación de especies reactivas de oxígeno (Zhao et al., 2020; Manono, 2026). Aunque la
mayoría de los estudios sobre salinidad se han centrado en el cloruro de sodio (NaCl), el potasio
también contribuye de manera relevante a la salinización de suelos áridos, donde puede alcanzar
concentraciones elevadas debido a la mineralogía local, la baja capacidad de lixiviación y el uso
intensivo de fertilizantes potásicos. En este contexto, el cloruro de potasio (KCl), por su alta
solubilidad, puede alterar la homeostasis iónica y el equilibrio K⁺/Na⁺, interferir con la absorción de
otros cationes esenciales y afectar negativamente la germinación y el crecimiento inicial, tal como se
ha documentado en diversos cultivos bajo salinidad inducida por KCl (Bibi et al., 2025). Estos
desbalances iónicos pueden modificar el potencial de membrana celular y desencadenar respuestas
de estrés oxidativo asociadas a alteraciones en el transporte de K⁺ (Zhao et al., 2020).
En México, particularmente en regiones áridas y semiáridas, la salinidad del suelo está dominada
principalmente por sodio (Na⁺), acompañado por aniones como Cl⁻, CO₃²⁻ y SO₄²⁻, mientras que el
potasio (K⁺) se presenta generalmente en menores concentraciones relativas en comparación con el
sodio, aunque su presencia puede influir en la dinámica iónica del suelo y en la fisiología vegetal.
En suelos agrícolas del país se han encontrado condiciones salino-sódicas asociadas a procesos de
evaporación, riego y dinámica de aguas subterráneas, las cuales se reflejan en valores de
conductividad eléctrica que pueden variar de aproximadamente 7 a >20 dS·m⁻¹ (Manzano-Banda et
al., 2014; González-Acevedo et al., 2016). En estas condiciones, la salinización suele implicar un
incremento del sodio intercambiable, el cual puede desplazar a Ca²⁺ y Mg²⁺, afectando la estructura
del suelo y la disponibilidad de agua para las plantas (González-Acevedo et al., 2016; Colmenero-
Chacón et al., 2023). A pesar de que el sodio es el principal ion asociado a la salinidad en estos
sistemas, el papel del potasio en condiciones de exceso iónico ha sido menos estudiado,
particularmente en especies xerófitas no domesticadas, lo que representa un vacío de conocimiento
en la comprensión de su respuesta fisiológica durante etapas tempranas como la germinación. En
este sentido, a pesar de la importancia ecológica y productiva del género Dasylirion en zonas áridas
y semiáridas, existe información limitada sobre su respuesta al exceso de K⁺ durante la germinación,
una fase particularmente sensible y determinante para el establecimiento exitoso de las plántulas en
ambientes con suelos salinos (Ortiz-López et al., 2024).
Bajo una perspectiva experimental, la germinación representa una fase crítica en el ciclo de vida de
las plantas, altamente sensible a factores abióticos como la salinidad, la cual puede afectar procesos
como la imbibición, el metabolismo y el establecimiento temprano de las plántulas (Zhao et al., 2020;
Joseph et al., 2021; Šerá y Hnilička, 2023; Manono, 2026). Aunque la mayoría de los estudios sobre
salinidad se han centrado en el cloruro de sodio (NaCl), existe evidencia de que otros cationes como
el potasio también pueden inducir respuestas fisiológicas bajo condiciones de salinidad, ya que
4
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
concentraciones elevadas de K⁺ pueden generar desequilibrios iónicos y afectar el crecimiento
vegetal (Lucini et al., 2016; Joseph et al., 2021; Ievinsh et al., 2022; Guan et al., 2022). En este sentido,
el uso de KCl en condiciones controladas permite aislar el efecto de los iones K⁺ y Cl⁻ y evaluar sus
implicaciones fisiológicas, sin la interferencia de otros factores presentes en sistemas edáficos
naturales (Viera-Santos et al., 2001).
Adicionalmente, la germinación presenta una variabilidad inherente asociada tanto a factores
genéticos como ambientales, incluso entre semillas provenientes de una misma población (Sharma
y Majee, 2023). En este estudio, el uso de una sola población permitió reducir la variabilidad genética
y enfocar el análisis en la respuesta fisiológica frente al tratamiento iónico. Asimismo, aunque las
especies no domesticadas pueden presentar dormancia y germinación heterogénea, el uso de
condiciones controladas de germinación permitió minimizar su efecto en la evaluación comparativa
de los tratamientos. En este contexto, el estudio de la respuesta de especies xerófitas no
domesticadas, como Dasylirion, frente a estrés iónico controlado, constituye un paso fundamental
para comprender los mecanismos fisiológicos que intervienen en su establecimiento temprano,
generando información base que podrá ser contrastada en futuros estudios bajo condiciones
ambientales naturales.
El objetivo del presente estudio fue evaluar el efecto de distintas concentraciones de cloruro de
potasio (KCl) in vitro, sobre la germinación y el establecimiento temprano de plántulas de Dasylirion,
a través del análisis de variables morfológicas y marcadores fisiológicos, incluyendo pigmentos
fotosintéticos, compuestos fenólicos y actividad antioxidante, con el propósito de generar
información básica sobre la respuesta fisiológica de Dasylirion a variaciones iónicas bajo condiciones
controladas, que pueda servir como base para futuros estudios en condiciones de campo.
2. Materiales y métodos
2.1 Recolección y escarificación de las semillas
Se recolectó una población de semillas Dasylirion sp. directamente de plantas ubicadas en el
jardín del museo de La Rodadora (31° 41' 23.5" N y -106° 25' 41.9" W), en el municipio de Juárez,
Chihuahua, el 25 de septiembre del 2025. La identificación taxonómica a nivel de género se realizó
con base en caracteres morfológicos diagnósticos descritos para Dasylirion, tales como la presencia de
hojas largas, lineares y fibrosas dispuestas en roseta basal densa, con márgenes provistos de espinas
o dientes, así como el hábito perenne característico del género (Bogler, 1995; Ortiz-Covarrubias et al.,
2022; Ruiz-Flores y Castro-Castro, 2024), sin embargo, la determinación a nivel especie no fue posible
debido a la ausencia de estructuras reproductivas (inflorescencias y flores) al momento de la colecta,
las cuales son esenciales para la discriminación entre especies dentro del género, debido a la alta
similitud morfológica en estado vegetativo. Durante el periodo de estudio no se dispuso de material
en estado reproductivo en el sitio de muestreo, por lo que no fue posible realizar la identificación a
nivel de especie.
Las semillas recolectadas se colocaron en una bolsa de papel y se transportaron al laboratorio de
reproducción del Instituto de Ciencias Biomédicas. Luego se procedió a la escarificación mecánica
para retirar la capa externa protectora de la semilla, considerando que, en especies xerófitas no
domesticadas, la cubierta seminal puede representar una barrera física para la imbibición, que afecta
5
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
la germinación. En total, se trabajó con 360 semillas seleccionadas al azar de la población recolectada.
El uso de una sola población respondió a la necesidad de reducir la variabilidad genética, y enfocar
el análisis en la respuesta fisiológica de las plántulas al tratamiento iónico bajo condiciones
controladas.
2.2 Condiciones de esterilización y germinación de las semillas
Una vez escarificadas, las semillas se colocaron en un vaso de precipitado estéril y se
cubrieron con 20 mL de agua y 5 gotas de jabón líquido, enseguida se colocaron y agitaron en un
agitador orbital (Envirco, México) durante 10 min a 50 rpm. Se retiró el agua jabonosa y se realizaron
dos lavados con agua destilada. Se añadieron 20 mL de Cloralex® al 10 % y se mantuvo la agitación
en las mismas condiciones del paso anterior. Enseguida, se realizaron dos lavados con agua
destilada, y se repitió el lavado con etanol al 70 %, con el mismo volumen de 20 mL, en las mismas
condiciones de agitación que los pasos anteriores. Finalmente, se dieron dos lavados adicionales con
agua destilada (Valero-Galván et al. 2024).
De las semillas así desinfectadas, se evaluaron cuatro tratamientos: un control con 13 mL de agua
destilada estéril y tres soluciones de KCl (Sigma-Aldrich, México) a concentraciones de 0.06, 0.12 y
0.19 mM. Para cada tratamiento se establecieron tres repeticiones independientes. En cada repetición
se sembraron 30 semillas (3 repeticiones por tratamiento, n = 90) en cajas de Petri con tres redondeles
de papel secante esterilizados en autoclave (Ecoshel, México). En cada caja se colocaron dos
redondeles en la base, sobre los cuales se distribuyeron seis filas homogéneas de cinco semillas,
cubriéndose posteriormente con un tercer redondel de papel. Cada repetición se regó con 13 mL de
la solución correspondiente al tratamiento asignado.
Enseguida, las placas de Petri con las semillas se colocaron en una cámara bioclimática a 25 °C, con
un fotoperíodo de 12 horas, condiciones establecidas para proporcionar un ambiente controlado que
favorezca la germinación y el desarrollo inicial de las plántulas, minimizando la variabilidad
ambiental durante el ensayo. Durante 21 días, las semillas se regaron cada 7 días en las mismas
condiciones descritas con anterioridad. Las cajas de Petri con las semillas se monitorearon todos los
días, y se registró el número de semillas germinadas por tratamiento y sus repeticiones durante los
21 días, considerando una semilla germinada, al presentar ≥ 1 mm de radícula. Los datos registrados
se utilizaron para determinar el porcentaje de germinación (Pg), el tiempo medio de germinación
(Tmg), velocidad media de germinación (Vmg), y el índice de velocidad de germinación (Ivg),
utilizando las fórmulas propuestas por Souza et al. (2016).
A los 21 días de germinación, también se extrajeron 15 plántulas por tratamiento y se midió la
longitud total de la plántula, raíz y hoja utilizando un vernier digital (Digimatic ABSOLUTE,
México). Asimismo, se determinó el peso total de la plántula, raíz y hoja usando una balanza analítica
de precisión (Denver Instrument, Alemania).
2.3. Extracción y cuantificación de pigmentos
Para la determinación de las clorofilas, carotenoides y xantofilas se obtuvo un extracto
estándar según el método propuesto por Lichtenthaler (1987) con algunas modificaciones (Valero-
Galván et al. 2024). Para cada tratamiento se realizaron tres replicas biológicas (tres plántulas
6
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
independientes), se molió 0.1 g de hojas en un mortero con la ayuda de un pistilo hasta obtener una
muestra disgregada homogénea (una por plántula como réplica biológica). Luego, se añadieron 2
mL de etanol al 100 % (v/v) (JT Baker, Estados Unidos) a la muestra homogénea de tejido y se mezcló
con el mismo pistilo hasta obtener una mezcla homogénea. Posteriormente, el homogenizado se
recuperó en un microtubo de 1.5 mL con la ayuda de una micropipeta. A continuación, la muestra
se agitó y sonicó a 4 °C en la oscuridad durante 30 min. Después, el extracto se centrifugó a 12.000
rpm a 4 °C durante 5 min, y el sobrenadante se recolectó en un nuevo microtubo de 1.5 mL.
Para la cuantificación se colocaron tres réplicas independientes (tres réplicas biológicas por cada
tratamiento) de 200 μL del extracto estándar, en tres celdas independientes de una microplaca de 96
celdas. Enseguida, se midieron las absorbancias a las longitudes de onda de 632 nm, 652 nm, 665 nm
y 696 nm en un espectrofotómetro (Bio-Rad, Estados Unidos). Los datos se obtuvieron con el
software Microplate Manager 6.0 (Bio-Rad, Estados Unidos). La concentración de clorofila a, clorofila
b, clorofila total, xantofilas y carotenoides se determinaron utilizando las ecuaciones propuestas por
Lichtenthaler (1987).
2.4. Cuantificación de fitoquímicos y actividad antioxidante
Para la cuantificación de los contenidos de compuestos fenólicos, flavonoides, azúcares
reductores y actividad antioxidante se realizó un extracto estándar según el método propuesto por
Valero-Galván et al. (2024). Se recolectaron por triplicado 0.030 g de hoja, los cuales se maceraron en
un mortero de porcelana adicionando 2 mL de metanol al 80 % frío (JT Baker, Estados Unidos). La
mezcla se transfirió a un tubo de microcentrífuga de 1.5 mL y se centrifugó a 5000 rpm durante 5
min. Posteriormente, la fase liquida se separó de la fase sólida y se almacenó en tubos de 2 mL.
La capacidad antioxidante del extracto se evaluó mediante el método FRAP (Valero-Galván et. al.
2024). Se depositaron 24 µL del extracto estándar por triplicado en una placa de 96 pocillos, se
añadieron 180 µL del reactivo de FRAP y se incubó durante 30 min en oscuridad. Para la actividad
antioxidante DPPH se depositaron 25 µL de cada extracto por triplicado en una placa de 96 pocillos
y se añadieron 200 µL de reactivo DPPH. La mezcla se dejó reposar durante 30 min en oscuridad.
Después del tiempo de reposo se midió la absorbancia de 595 nm para FRAP y 517 nm para DPPH
en un espectrofotómetro (Bio-Rad, Estados Unidos). Los datos se obtuvieron con el software
Microplate Manager 6.0 (Bio-Rad, Estados Unidos). La cuantificación de ambas pruebas se realizó
mediante una curva de calibración utilizando Trolox (Sigma-Aldrich, México) como estándar. Los
resultados se expresaron en μM equivalentes de Trolox por gramo de peso seco (μM ET·g⁻¹ PS).
Para la cuantificación de compuestos fenólicos totales se utilizó el método de Folin-Ciocalteu
(Valero-Galván et al. 2024). En una placa de 96 pocillos, se depositaron por triplicado 25 µL de cada
extracto, 100 μL de carbonato de sodio (Na₂CO₃) (7.5 %, Sigma-Aldrich, México) y 125 µL de reactivo
de Folin-Ciocalteu (2N, Sigma-Aldrich, México). La mezcla se dejó reposar en oscuridad durante 15
min y se midió la absorbancia a 710 nm en un espectrofotómetro (Bio-Rad, Estados Unidos). Los
datos se obtuvieron con el software Microplate Manager 6.0 (Bio-Rad, Estados Unidos). Para la
cuantificación se elaboró una curva de calibración con ácido gálico (Sigma-Aldrich, México) como
estándar. Los resultados se expresaron como mg de equivalentes de ácido gálico por gramo de peso
seco (mg EAG·g⁻¹ PS).
7
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
Para la cuantificación de azúcares reductores se utilizó el método del ácido 3,5-dinitrosalicílico
(DNS) (Valero-Galván et al. 2024). Se mezclaron 50 µL de extracto y 300 µL de reactivo DNS (Sigma-
Aldrich, México) en un tubo Eppendorf, se calentó a 95 °C durante 5 min en un termobloque y, una
vez a temperatura ambiente, se colocaron 150 µL de cada muestra en una placa de 96 pocillos y se
midió la absorbancia a 540 nm (Sigma-Aldrich, México). Para la cuantificación se preparó una curva
de calibración tomando la glucosa (Sigma-Aldrich, México) como estándar, y los resultados se
expresaron como mg de glucosa por gramo de masa seca (mg GLU·g⁻¹ PS).
2.5. Análisis estadístico
Se utilizó el software IBM SPSS Statistics versión 22.0 para realizar un análisis de varianza
(ANOVA) de una vía, con el objetivo de identificar diferencias estadísticamente significativas entre
los tratamientos de concentración de KCl analizados. El nivel de significancia se estableció en p <
0.05. Posteriormente, se aplicó una prueba de comparación de medias de Tukey para identificar
diferencias específicas entre los grupos. El diseño experimental fue completamente aleatorizado, con
tres repeticiones por tratamiento, considerando cada repetición como una unidad experimental
independiente. Además, se realizó un análisis de correlación de Pearson con un nivel de confianza del
0.05 entre las variables de las concentraciones de KCl y morfológicas, germinación, pigmentos
fotosintéticos, compuestos fenólicos y actividad antioxidante.
3. Resultados y discusión
3.1. Efecto del KCl en los índices de germinación
En la Fig. 1 se muestra el crecimiento de las plántulas de sotol en condiciones de estrés, bajo
el tratamiento de las diferentes concentraciones de KCl a los 21 días de germinación.
Figura 1. Efecto de las tres concentraciones de KCl sobre las características morfológicas de las
plántulas de sotol a los 21 días después de su germinación.
Figure 1. Effect of three KCl concentrations on the morphological characteristics of sotol seedlings
21 days after germination.
8
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
Los resultados mostraron diferencias estadísticamente significativas en el porcentaje de germinación
(Pg), el tiempo medio de germinación (Tmg), velocidad media de germinación (Vmg) y el índice de
velocidad de germinación (Ivg). El tratamiento control presentó un 100 % de germinación, lo cual
confirmó la viabilidad del lote de semillas bajo las condiciones experimentales, asimismo, la
germinación observada en los tratamientos confirmó la capacidad germinativa de las semillas en
diferentes condiciones iónicas. El Pg mostró una disminución progresiva de 6.6 %, 20 % y 90 %, en
0.06, 0.12 y 0.19 mM de KCl, respectivamente. De manera similar, el Ivg disminuyó 6.79 %, 20.38 %
y 91.85 %, conforme aumentó la concentración de KCl. Así mismo, el Vmg permaneció sin cambios
en las dos primeras concentraciones, sin embargo, se observó una reducción del 16.67 % en la
concentración más alta de KCl. En contraste, el Tmg se comportó igual a 0.06–0.12 mM (–1.04 % y –
0.60 %, respectivamente), pero aumentó un 20.48 % en la concentración de 0.19 mM, evidenciando
retraso en la emergencia bajo el nivel de KCl más elevado (Tabla 1).
Índices de
germinación
Concentración de KCL
0 mM
0.06 mM
0.12 mM
0.19 mM
Pg (%)
100.00±0.57a
93.33±0.38b
80.00±0.57c
10.00±0.57d
Tmg (días)
8.30±0.02b
8.21±0.02b
8.25±0.02b
10.00±0.57a
Vmg (días-1)
0.12±0.00b
0.12±0.01b
0.12±0.01b
0.10±0.01a
Ivg (días)
3.68±0.00a
3.43±0.02b
2.93±0.02c
0.30±0.00d
Los índices Pg y el Ivg se correlacionaron negativamente con las concentraciones de KCl (r = −0.901,
p<0.001), lo que evidenció que el incremento en la salinidad redujo simultáneamente la proporción
de semillas germinadas y la rapidez de germinación de las semillas. Del mismo modo, el Vmg se
correlacionó negativamente con las concentraciones de KCl (r = −0.773, p<0.05), indicando que el
incremento en la salinidad del medio disminuye la eficiencia de la germinación de las semillas. En
contraste, el Tmg se correlacionó positivamente con las concentraciones de KCl (r = 0.784, p<0.05), lo
que sugirió que a mayores concentraciones de KCl se requiere más tiempo para completar el proceso
germinativo de las semillas.
En estos resultados se observó que el incremento en la concentración de KCl afectó negativamente
el porcentaje y velocidad de germinación, pero aumentó el tiempo medio de germinación de las
semillas de Dasylirion sp. Este comportamiento es consistente con lo observado en especies de pastos,
donde las semillas expuestas a diferentes concentraciones de KCl mostraron una disminución en el
9
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
porcentaje e índice de germinación, así como un incremento en el tiempo medio de germinación
(Ruiz y Terenti, 2012). De manera similar, en semillas de Capsicum annuum L., el porcentaje de
germinación disminuyó progresivamente conforme aumentó la concentración de KCl, evidenciando
una respuesta negativa al estrés iónico (Joseph et al., 2021). Estos resultados sugieren que el exceso
de KCl puede afectar procesos fisiológicos clave durante la germinación, como la imbibición y la
activación metabólica (Lucini et al., 2016). Sin embargo, el presente estudio aporta evidencia
específica sobre la sensibilidad fisiológica de Dasylirion sp. a gradientes controlados de K⁺, un aspecto
poco documentado en especies xerófitas no domesticadas, particularmente durante etapas
tempranas del desarrollo.
De manera consistente, en semillas germinadas de sotol [D. acrotrichum (Schiede) Zucc.], el efecto de
NaCl disminuyó la velocidad de germinación y aumentó el tiempo necesario para completar ese
proceso (Valero-Galván et al., 2024), sin embargo, en dicho estudio el porcentaje de germinación no
fue afectado por el incremento de la concentración de NaCl (Valero-Galván et al., 2024). Asimismo,
estudios similares han sido reportados en trigo (Triticum aestivum L.), donde tratamientos con NaCl
afectaron negativamente el índice y la velocidad media de germinación, mientras que incrementaron
el tiempo medio de germinación (Fuller et al., 2012). Este patrón coincide con lo observado en otras
especies sometidas a salinidad, donde la germinación disminuye y el tiempo requerido para
completarla aumenta conforme se incrementa la concentración de sales (Irik y Bikmaz, 2024).
Además, se ha observado que en Dasylirion sp., las semillas presentan latencia exógena y una baja
tolerancia a condiciones adversas durante la etapa germinativa, lo que contribuye a su sensibilidad
a factores ambientales como el estrés salino (Ortiz-López et al., 2024). En el presente estudio se
observó una disminución marcada de la germinación a la concentración más alta de KCl, lo que
sugiere una respuesta fisiológica sensible al exceso de potasio en las semillas analizadas. Estos
efectos pueden atribuirse principalmente al estrés osmótico, que reduce la disponibilidad de agua
para la imbibición, y a la toxicidad iónica, que altera funciones metabólicas esenciales durante las
primeras fases de la germinación (Valero-Galván et al., 2024; Manono, 2026).
Las concentraciones de KCl empleadas corresponden a un gradiente controlado diseñado para
evaluar la sensibilidad fisiológica de las semillas de Dasylirion frente a variaciones iónicas,
permitiendo identificar umbrales de respuesta en germinación y desarrollo temprano bajo
condiciones experimentales. En este sentido, el diseño experimental se orienta a caracterizar la
respuesta biológica de la especie ante el exceso de K⁺, estableciendo una base comparativa para
comprender su comportamiento frente al estrés iónico. Se hipotetiza que el incremento en la
concentración de KCl inducirá una reducción progresiva en la germinación y el crecimiento de las
plántulas, debido a alteraciones en procesos fisiológicos clave asociados al balance hídrico y
metabólico. Adicionalmente, aunque se emplearon 90 semillas por tratamiento, la unidad
experimental correspondió a la caja de Petri, con tres repeticiones independientes por tratamiento.
En consecuencia, el tamaño de muestra efectivo utilizado en los análisis estadísticos fue de n = 3, lo
cual constituye una limitación inherente en términos de potencia estadística, pudiendo restringir la
detección de diferencias de baja magnitud entre tratamientos. Finalmente, el potasio es un nutriente
esencial para las plantas y su aplicación forma parte de esquemas de fertilización en condiciones de
cultivo. No obstante, en este estudio se evaluó el efecto del KCl como agente de estrés iónico bajo
condiciones experimentales controladas, por lo que los resultados no deben interpretarse en el
contexto de su función nutricional en campo.
10
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
3.2. Efecto del KCl en el peso y morfometría de las plántulas
En el presente estudio, también se observó el efecto de las diferentes concentraciones de KCl
exógeno sobre el peso y la morfometría de las plántulas después de 21 días de germinación. Los
resultados mostraron diferencias estadísticamente significativas en el peso de la hoja, raíz, peso total
de la plántula, largo de hoja, largo de la raíz y largo total de las plántulas. Se observó que el KCl
redujo el peso total en un 44.4 %, 72.2 % y 100 % (0.06, 0.12 y 0.19 mM, respectivamente), el peso de
la hoja (38.7 %, 69.3 % y 100 %) y el peso de raíz (58.3 %, 75 % y 100 %). Asimismo, se observó una
reducción en la longitud total de la plántula (29 %, 68.8 % y 100 %), el largo de la raíz (57.03 %, 39.39
% y 100 %) y el largo de la hoja (10.81 %, 87.02 % y 100 %) (Tabla 2).
Tabla 2. Efecto de diferentes concentraciones KCl en la morfometría de las plántulas de Dasylirion
sp. después de 21 días de germinación.
Table 2. Effect of different KCl concentrations on the morphometry of Dasylirion sp. seedlings after
21 days of germination.
Características
Concentración de KCL
0 mM
0.06 mM
0.12 mM
0.19 mM
Peso total (g)
0.072±0.013a
0.040±0.01b
0.020±0.007c
0.0±0.0d
Peso hoja (g)
0.049±0.013a
0.030±0.01b
0.015±0.008c
0.0±0.0d
Peso raíz (g)
0.024±0.008a
0.010±0.01b
0.006±0.001c
0.0±0.0d
Longitud total
(cm)
13.16±1.79a
9.29±5.21ab
4.09±2.35b
0.0±0.0c
Largo raíz (cm)
5.07±0.81a
2.18±1.05b
3.04±1.83b
0.0±0.0c
Largo hoja (cm)
8.08±0.97a
7.21±4.16a
1.05±0.52b
0.0±0.0b
Se muestran los valores promedio ± desviación estándar (n = 15 plantas por tratamiento); las letras
en los superíndices representan los grupos estadísticamente diferentes según la prueba de
comparación de medias de Tukey (p≤ 0.05).
Estos resultados confirman que las plántulas de Dasylirion sp. fueron altamente sensible a las
diferentes concentraciones de KCl evaluadas (Tabla 2). Al correlacionar los pesos, morfometría de
las plántulas y las diferentes concentraciones de KCl mediante el análisis de correlaciones de
Pearson, se observó que el peso de la hoja y total de las plántulas presentaron correlaciones negativas
fuertes (r = –0.912 y –0.908, respectivamente). De manera similar, se observaron correlaciones
negativas para el peso de raíz (r = –0.663), longitud de raíz (r = –0.681) y longitud total de la plántula
(r = –0.609), mientras que la longitud de hoja presentó una correlación negativa moderada (r = –
0.551). Estos resultados claramente evidenciaron que el incremento en la concentración de KCl
redujo la biomasa de las plántulas tras los 21 días de desarrollo.
En el caso de la longitud de raíz, no se observó una respuesta en función de la concentración de KCl,
ya que el valor promedio disminuyó a 0.06 mM, presentó un incremento a 0.12 mM y finalmente se
inhibió completamente a 0.19 mM. Este comportamiento puede estar influenciado por la alta
11
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
variabilidad observada entre repeticiones, particularmente en el tratamiento de 0.12 mM, lo cual
limita la definición de un patrón de respuesta consistente en el rango de concentraciones evaluado.
Asimismo, los tratamientos de 0.06 y 0.12 mM no presentaron diferencias estadísticas entre sí, lo que
sugiere que las variaciones observadas en los valores promedio podrían no reflejar un efecto
fisiológico diferenciable, sino la variabilidad inherente al sistema experimental. En contraste, la
inhibición total del crecimiento radical a 0.19 mM evidencia un efecto claro del KCl a concentraciones
más elevadas. De manera consistente, en plántulas de Capsicum annuum se ha reportado que el
tratamiento con KCl reduce el crecimiento tanto del sistema radical como del sistema aéreo en
comparación con el control, observándose un efecto negativo progresivo conforme aumenta la
concentración de la sal (Joseph et al., 2021). En dicho estudio, las plántulas desarrolladas en
condiciones control presentaron un mayor crecimiento, mientras que concentraciones elevadas de
KCl resultaron en un desarrollo radicular y de brote significativamente limitado. Este
comportamiento coincide con lo observado en el presente estudio, donde el incremento en la
concentración de KCl afectó negativamente la biomasa y el crecimiento de las plántulas, lo que
sugiere que el estrés iónico puede interferir con procesos fisiológicos esenciales asociados al
desarrollo vegetal temprano.
Estos resultados fueron similares a los obtenidos en plántulas de D. acrotrichum, donde se observó
que concentraciones crecientes de NaCl disminuyeron la biomasa foliar y radicular, la longitud de
las hojas y raíces de plántulas germinadas a los 21 días (Valero-Galván et al., 2024). También, en este
estudio se confirmó que la salinidad no solo afecta la germinación de la semilla, sino también el
desarrollo temprano de las plántulas de sotol. Sin embargo, una diferencia importante entre ambos
estudios radicó en la intensidad del efecto de la sal usada, mientras que en las plántulas del sotol
sometidas a NaCl se redujeron progresivamente la biomasa y la morfometría de las plántulas, el KCl
impactó severamente la biomasa de las plántulas de sotol, sugiriendo una mayor susceptibilidad a
la acumulación de potasio que a la exposición de NaCl. Estos resultados son consistentes con la eco-
fisiología de plantas de zonas áridas, donde la tolerancia al sodio suele ser relativamente mayor
debido a su presencia natural en los suelos, mientras que concentraciones elevadas de potasio
pueden producir desbalances iónicos más rápidos, reduciendo la turgencia celular, afectando
procesos como la expansión de tejidos y la estabilidad de membranas. Estos resultados también
fueron consistentes con los obtenidos en plantas de Agave durangensis Gentry, A. lechuguilla Torr. y
A. salmiana Otto ex Salm-Dyck, donde concentraciones de NaCl disminuyeron variables del peso
fresco, la biomasa aérea y el crecimiento radicular, afectando la capacidad de las plántulas para
establecerse, lo cual refuerza que las especies de Asparagaceae comparten respuestas eco-fisiológicas
semejantes, ante la exposición a la salinidad en los suelos (Campos et al., 2020; Gallegos-Hernández
et al., 2024). En otras especies no relacionadas como en el caso de Triticum aestivum, el estrés salino
redujo el contenido de agua en los tejidos, la longitud de hojas y raíces y la biomasa total (Taïbi et
al., 2016; Lan et al., 2020). Por lo tanto, el estrés salino actúa principalmente reduciendo la
disponibilidad de agua para la expansión celular, disminuyendo la turgencia y limitando procesos
fisiológicos esenciales para la producción de biomasa. En este estudio, el potasio parece generar
efectos más severos que el sodio, lo que implica que la acumulación de K⁺ en suelos áridos puede
representar un factor limitante para el establecimiento y desarrollo de plántulas en ecosistemas
donde Dasylirion es una especie clave (Valero-Galván et al. 2024).
12
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
3.3. Efecto del KCl en el contenido fitoquímico en hojas
En el presente estudio también se observó el efecto de las diferentes concentraciones de KCl
exógeno sobre el contenido de pigmentos, fitoquímicos y actividad antioxidante en las hojas de
plántulas después de 21 días de germinación. Los resultados mostraron diferencias estadísticamente
significativas en el contenido de clorofilas, xantofilas, carotenoides, fenólicos y actividad
antioxidante. Estos resultados indicaron que el incremento de KCl redujo claramente las clorofilas
de las hojas de las plántulas después de los 21 días de germinación. Respecto al control, la clorofila
a disminuyó 51 %, 92 %, y 100 % en las concentraciones de 0.06, 0.12 y 0.19 mM, respectivamente;
mientras que el contenido de la clorofila b se redujo en un 65 %, 87 % y 100 %, y el contenido de la
clorofila total en un 56 %, 90 % y 100 %. Del mismo modo, el contenido de xantofilas descendió 33
%, 83.40 % y 100 %, mientras que los carotenos mostraron una reducción del 28 %, 10 % y 100 %. En
el contenido de fenólicos totales también disminuyeron 3 %, 29 % y 100 %. La actividad antioxidante
por DPPH disminuyó 4.6 % en 0.06 mM, mientras que aumentó en un 0.4 % em 0.12 y disminuyó un
100 % en 0.19 mM (Tabla 3).
Tabla 3. Efecto de diferentes concentraciones de KCl sobre el contenido fitoquímico y
actividad antioxidante en hojas de plántulas de Dasylirion sp.
Table 3. Effect of different concentrations of KCl on phytochemical content and antioxidant
activity in leaves of seedlings of Dasylirion sp.
Fitoquímico y
actividad
antioxidante
Concentraciones de KCL
Control
0.06 mM
0.12 mM
0.19 mM
Clorofila a*
192.40±51.25a
93.74±5.74b
14.72±3.29c
0.0±0.0d
Clorofila b*
113.86±2.75a
39.48±4.81b
14.68±4.79c
0.0±0.0d
Clorofila total*
306.24±3.93a
133.22±6.45b
29.36±6.01c
0.0±0.0d
Xantofilas*
32.66±6.92a
21.62±4.52b
5.42±2.3c
0.0±0.0d
Carotenoides*
9.29±0.81a
6.68±3.25a
8.33±8.71b
0.0±0.0c
Fenólicos**
20.52±0.86a
19.8±1.48a
14.5±0.46b
0.0±0.0c
DPPH***
21.49±0.92a
20.50±0.61a
21.58±0.81a
0.0±0.0b
Se muestran los valores promedio ± desviación estándar (n=3); las letras en los superíndices
representan los grupos estadísticamente diferentes según la prueba de comparación de
medias de Tukey (p≤ 0.05). * mg g-1; ** mg EAG g-1, ***µM ET g-1.
13
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
Este comportamiento puede explicarse a partir de alteraciones metabólicas inducidas por el estrés
iónico. Se ha reportado que el incremento en la concentración de KCl reduce la eficiencia fotosintética
en plántulas de Capsicum annuum, evidenciado por la disminución en la actividad de transporte
electrónico y cambios en la relación clorofila a/b, lo que indica una afectación en el aparato
fotosintético. Asimismo, se ha observado una reducción en la actividad de la enzima amilasa y en el
contenido de carbohidratos, lo que limita la conversión de reservas en compuestos solubles
necesarios para la germinación y el desarrollo inicial de las plántulas. En conjunto, estos efectos
sugieren que el estrés por KCl interfiere con procesos fisiológicos clave, como la movilización de
reservas y el metabolismo energético, lo que contribuye a la disminución en la germinación y el
crecimiento observados en el presente estudio (Joseph et al., 2021).
De manera complementaria, estos cambios pueden interpretarse como parte de una respuesta
metabólica compleja al estrés iónico. Estudios metabolómicos realizados en plantas de alcachofa
(Cynara cardunculus L.) han demostrado que el tratamiento con KCl induce una reorganización del
metabolismo fenólico, con disminución de algunos flavonoides y acumulación de otros compuestos
asociados a la defensa, lo que sugiere una redistribución de los metabolitos secundarios en respuesta
al estrés. Asimismo, se ha observado un desbalance en el perfil de fitohormonas, caracterizado por
alteraciones en citoquininas, auxinas y giberelinas, lo que refleja una modificación en los mecanismos
de regulación del crecimiento vegetal. De manera paralela, el incremento en metabolitos asociados
al estrés oxidativo y a la lipoperoxidación, indicó daño a nivel de membranas celulares (Lucini et al.,
2016). En conjunto, estos cambios evidencian que el estrés por KCl afecta múltiples niveles del
metabolismo vegetal, lo que podría explicar las alteraciones fisiológicas observadas en el presente
estudio.
Además, estos resultados fueron similares a los obtenidos en plántulas de D. acrotrichum, donde
concentraciones crecientes de NaCl disminuyeron el contenido de las clorofilas y la capacidad
antioxidante, sin embargo, el impacto máximo se observó solamente en las concentraciones más altas
(Valero-Galván et al. 2024). En contraste, en el presente estudio el KCl provocó reducciones mucho
más drásticas, alcanzando pérdida total de pigmentos incluso en niveles intermedios. Esta diferencia
sugiere que, al igual que en la germinación y el crecimiento inicial, el potasio ejerce un efecto tóxico
más severo que el sodio en este género, posiblemente debido a su influencia sobre la homeostasis
iónica y la estabilidad de membranas cloroplásticas (Valero-Galván et al. 2024). También se observó
una disminución en el contenido de las xantofilas y carotenos, esto podría implicar que las plántulas
de sotol pudieron quedar más expuestas al daño foto-oxidativo. Este efecto también se ha observado
en otras especies como Lactuca sativa L., Cucurbita maxima Duch., Triticum aestivum y Phaseolus
vulgaris L., donde el efecto de la salinidad en las plántulas redujo el contenido de carotenoides y
xantofilas (Taïbi et al., 2016; Shin et al., 2020; Lan et al., 2020; Tarchoun et al., 2022).
En el presente estudio también se observó una reducción en los compuestos fenólicos y la actividad
antioxidante. Este comportamiento contrasta con lo encontrado en algunas especies expuestas al
estrés salino como Stevia rebaudiana (Bertoni) Bertoni, Polygonum equisetiforme Sm. y Agave
durangensis, en las que se observó un aumento en el contenido de fenólicos y actividad antioxidante
como mecanismo de protección ante el exceso de radicales libres (Taïbi et al., 2016; Boughalleb et al.,
2020; Gallegos-Hernández et al., 2024). La ausencia de esta respuesta adaptativa en Dasylirion sp.,
sugiere que la severidad del daño provocado por el potasio, supera la capacidad del tejido para
activar rutas antioxidantes, o bien que el estrés afecta tempranamente las vías biosintéticas
responsables de producir estos compuestos. Esto confirma que el potasio constituye un factor de
14
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
estrés más severo en las plántulas evaluadas, afectando tanto procesos estructurales como
metabólicos esenciales para el establecimiento temprano bajo condiciones experimentales (Valero-
Galván et al. 2024).
4. Conclusiones
Este estudio demuestra que las semilas de Dasylirion sp. evaluadas, presentan una alta
sensibilidad a la salinidad inducida por KCl en las etapas tempranas de su desarrollo bajo
condiciones controladas in vitro. Durante la germinación, el incremento en la concentración de KCl
redujo la eficiencia germinativa y prolongó el tiempo requerido para completar este proceso. En el
desarrollo de las plántulas, la salinidad afectó de manera marcada la biomasa foliar, radicular y total,
limitando su crecimiento y capacidad de establecimiento. Finalmente, el análisis bioquímico reveló
un deterioro del aparato fotosintético y de la capacidad antioxidante, indicando que el estrés iónico
supera la capacidad fisiológica de respuesta de las plántulas evaluadas. En este contexto, los
resultados aportan información específica sobre la respuesta fisiológica de Dasylirion sp. frente a
gradientes controlados de K⁺, contribuyendo al entendimiento de los mecanismos asociados al
establecimiento temprano de especies xerófitas no domesticadas. Esta información constituye una
base experimental para futuros estudios, orientados a evaluar la tolerancia a la salinidad en
condiciones ambientales, y a comparar respuestas entre poblaciones o especies del mismo género.
Agradecimientos
La presente investigación fue realizada con el apoyo de la infraestructura de los laboratorios
del Departamento de Ciencias Químicos Biológicas del Instituto de Ciencias Biomédicas de la
Universidad Autónoma de Ciudad Juárez.
Conflicto de interés
Los autores no tienen conflicto de intereses, en la publicación de estos resultados.
5. Referencias
Benavides-Mendoza, A., Hernández-Juárez, A., & Francisco-Francisco, N. (2023). Germinación,
crecimiento vegetativo y morfología floral de Dasylirion cedrosanum del matorral rosetófilo
de Coahuila. CienciaUAT 18(1):191–201. https://doi.org/10.29059/cienciauat.v18i1.1772
Bibi, S., Ahmad, M., Ibadullah, Khan, F.M., Khan, A., & Yaseen, M. (2025). Effect of potassium
chloride induced salinity on germination and potassium uptake by various wheat
genotypes. Pure and Applied Biology 14(4):1166–1179.
https://doi.org/10.19045/bspab.2025.140105
Bogler, D. J. (1995). Dasylirion systematics: taxonomy and molecular phylogeny. Botanical Sciences
56:69-76. https://doi.org/10.17129/botsci.1465
15
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
Boughalleb, F., Abdellaoui, R., Mahmoudi, M., & Bakhshandeh, E. (2020). Changes in phenolic
profile, soluble sugar, proline, and antioxidant enzyme activities of Polygonum
equisetiforme in response to salinity. Turkish Journal of Botany 44(1):25–35.
https://doi.org/10.3906/bot-1908-2
Campos, H., Trejo, C., Peña Valdivia, C.B., García Nava, R., Conde Martínez, F.V., & Cruz Ortega,
R. (2020). Water availability effects on germination, membrane stability and initial root
growth of Agave lechuguilla and A. salmiana. Flora 268:151606.
https://doi.org/10.1016/j.flora.2020.151606
Colmenero-Chacón, C.P., Morales-deAvila, H., Gutiérrez, M., Esteller-Alberich, M.V., & Alarcón-
Herrera, M.T. (2023). Enrichment and temporal trends of groundwater salinity in central
Mexico. Hydrology 10(10):194. https://doi.org/10.3390/hydrology10100194
FAO. (2021). Global map of salt‐affected soils gsasmap v1.0. Food and Agriculture Organization of
the United Nations, Rome. https://www.fao.org/documents/card/en/c/cb7247en
FAO. (2024). Global status of salt-affected soils - Main report. Food and Agriculture Organization of
the United Nations, Rome. https://doi.org/10.4060/cd3044en
Fuller, M.P., Hamza, J.H., Rihan, H.Z., & Al-Issawi, M. (2012). Germination of primed seed under
NaCl stress in wheat. International Scholarly Research Notices 2012(1):167804.
https://doi.org/10.5402/2012/167804
Gallegos-Hernández, G., Almaraz-Abarca, N., Delgado-Alvarado, E.A., Ávila-Reyes, J.A., &
Torres-Ricario, R. (2024). Variation of the chemical and biochemical responses to salinity
during germination and early growth of seedlings of two populations
of Agave durangensis Gentry. Plant Science Today 11(2):193–
204. https://doi.org/10.14719/pst.2963
González-Acevedo, Z.I., Padilla-Reyes, D.A., & Ramos-Leal, J.A. (2016). Quality assessment of
irrigation water related to soil salinization in Tierra Nueva, San Luis Potosí, Mexico. Revista
Mexicana de Ciencias Geológicas 33(3):271-285.
https://rmcg.geociencias.unam.mx/index.php/rmcg/article/view/438
Guan, P., Xie, C., Zhao, D., Wang, L., & Zheng, C. (2022). SES1 is vital for seedling establishment and
post-germination growth under high-potassium stress conditions in Arabidopsis
thaliana. PeerJ 10, e14282. https://doi.org/10.7717/peerj.14282
Ievinsh, G., Andersone-Ozola, U., & Jēkabsone, A. (2022). Similar responses of relatively salt-tolerant
plants to Na and K during chloride salinity: Comparison of growth, water content and ion
accumulation. Life 12(10):1577. https://doi.org/10.3390/life12101577
Irik, H.A., & Bikmaz, G. (2024). Effect of different salinity on seed germination,
growth parameters and biochemical contents of pumpkin (Cucurbita
pepo L.) seeds cultivars. Scientific Reports 14:6929. https://doi.org/10.1038/s41598-024-55325-
w
Joseph, E., Pius, C., & Mendez, A. (2021). Effect of potassium chloride stress on seed germination
and growth of Capsicum annuum L. International Journal of Research in Engineering and Science
9(7):30-34. https://www.ijres.org/papers/Volume-9/Issue-7/Series-6/E09073034.pdf
Juárez-Morales, M., Martínez-Salvador, M., Chávez-Mendoza, C., Villarreal-Guerrero, F., Pinedo-
Álvarez, A., Santellano-Estrada, E., Corrales-Lerma, R., Hernández-Quiroz, N.S., & Vega-
Mares, J.H. (2023). Ecological attributes of the shrubby community of sotol
(Dasylirion leiophyllum) in the Chihuahuan Desert,
Mexico. Forests 14(12):2343. https://doi.org/10.3390/f14122343
Lan, C.Y., Lin, K.H., Chen, C.L., Huang, W.D., & Chen, C.C. (2020). Comparisons of chlorophyll
fluorescence and physiological characteristics of wheat seedlings influenced by iso-osmotic
16
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
stresses from polyethylene glycol and sodium chloride. Agronomy 10(3):
325. https://doi.org/10.3390/agronomy10030325
Lichtenthaler, H.K. (1987). Chlorophylls and carotenoids: Pigments of photosynthetic
biomembranes. Methods in Enzymology148:350-382. https://doi.org/10.1016/0076-
6879(87)48036-1
Lucini, L., Borgognone, D., Rouphael, Y., Cardarelli, M., Bernardi, J. & Colla, G. (2016). Mild
potassium chloride stress alters the mineral composition, hormone network, and phenolic
profile in artichoke leaves. Frontiers in Plant Science 7: 948.
https://doi.org/10.3389/fpls.2016.00948
Madrid -Solórzano, J.M., Garcia-Alcaraz, J.L., & Valles -Rosales, D.J. (2021). La producción de sotol:
revisión de literatura sistemática. Mundo FESC 11(S2):107-117. https://doi.org/10.61799/2216-
0388.917
Manono, B.O. (2026). Effects of salinity on seed germination: Mechanisms, impacts, and mitigation
strategies. Seeds 5(1):1. https://doi.org/10.3390/seeds5010001
Manzano-Banda, J.I., Rivera-Ortiz, P., Briones-Encinia, F., & Zamora-Tovar, C. (2014). Rehabilitación
de suelos salino-sódicos: estudio de caso en el distrito de riego 086, Jiménez, Tamaulipas,
México. Terra Latinoamericana 32(3):211-219.
https://terralatinoamericana.org.mx/index.php/terra/es/article/view/25
Nachshon, U. (2018). Cropland soil salinization and associated hydrology: Trends, processes and
examples. Water 10(8):1030. https://doi.org/10.3390/w10081030
Ortiz, A., Velasco-Velasco, V.A., Martínez-Gutiérrez, G.A., Campos-Angeles, G.V., & Rodríguez-
Ortiz, G. (2023). La germinación de semillas de Dasylirion spp. en condiciones de laboratorio:
Morfología del fruto de Dasylirion. Revista Mexicana de Agroecosistemas 10(2):78–
89. https://doi.org/10.60158/rma.v10i2.369
Ortiz-Covarrubias, Y.C., Orozco-Sifuentes, M.M., Mendoza-Rodríguez, D.V., Villlarreal-Quintanilla,
J.A., Martínez, O., Hernández-Godínez, F., & Reyes-Valdés, M.H. (2022). Phylogeny, origin
and diversification of the Dasylirion genus based on matK and rbcL sequences. Plant Genetic
Resources 20(2):108-115. https://doi.org/10.1017/S1479262122000181
Ortiz-López, A., Velasco-Velasco, V.A., Martínez-Gutiérrez, G.A., Campos-Ángeles, G.V., &
Rodríguez-Ortiz, G. (2024). Potencial germinativo de Dasylirion spp. como respuesta a
regímenes térmicos pregerminativos. Ecosistemas y Recursos Agropecuarios 11(3):
e4005. https://era.ujat.mx/rera/es/article/view/4005
Ruiz, M., & Terenti, O. (2012). Germinación de cuatro pastos bajo condiciones de estrés salino. Phyton
(Buenos Aires) 81(2):169-176.
https://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1851-
56572012000200006&lng=es&tlng=es
Ruiz-Flores, S.I, & Castro-Castro, A. (2024). Distribución, riqueza, endemismo y conservación del
género Dasylirion (Asparagaceae, Convallarioideae). Acta Botánica Mexicana (131):
e2367. https://doi.org/10.21829/abm131.2024.2367
Sánchez-Madrigal, M.Á. (2019). Extracción y caracterización de fructanos a partir de plantas de sotol
(Dasylirion spp.) y agave (Agave tequilana Weber var. azul) mediante métodos enzimáticos
asistidos con tecnologías de ultrasonido y su aplicación en alimentos (Tesis Doctoral,
Universidad Autónoma de Nuevo León). 259 p. http://eprints.uanl.mx/id/eprint/18349
Šerá, B., & Hnilička, F. (2023). Genetic and environmental factors affecting seed
germination. Plants 12(24):4106. https://doi.org/10.3390/plants12244106
17
González-Fernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XX (2026): enero-diciembre, e2311
Sharma, E., & Majee, M. (2023). Seed germination variability: why do genetically identical seeds not
germinate at the same time? Journal of Experimental Botany 74(12):3462–3475.
https://doi.org/10.1093/jxb/erad101
Shin, Y.K., Bhandari, S. R., Jo, J. S., Song, J. W., Cho, M. C., Yang, E. Y., & Lee, J.G. (2020). Response
to salt stress in lettuce: Changes in chlorophyll fluorescence parameters, phytochemical
contents, and antioxidant activities. Agronomy 10(11):
1627. https://doi.org/10.3390/agronomy10111627
Souza, L.F., Gasparetto, B.F., Lopes, R.R., & Barros, I.B.I. (2016). Temperature requirements for seed
germination of Pereskia aculeata and Pereskia grandifolia. Journal of Thermal Biology 57: 6-10.
https://doi.org/10.1016/j.jtherbio.2016.01.009
Stavi, I., Thevs, N., & Priori, S. (2021). Soil salinity and sodicity in drylands: A review of causes,
effects, monitoring, and restoration measures. Frontiers in Environmental Science 9:
712831. https://doi.org/10.3389/fenvs.2021.712831
Taïbi, K., Taïbi, F., Abderrahim, L.A., Ennajah, A., Belkhodja, M., & Mulet, J.M. (2016). Effect of salt
stress on growth, chlorophyll content, lipid peroxidation and antioxidant defense systems
in Phaseolus vulgaris L. South African Journal of Botany 105: 306–
312. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2016.03.011
Tarchoun, N., Saadaoui, W., Mezghani, N., Pavli, O.I., Falleh, H., & Petropoulos, S.A. (2022). The
effects of salt stress on germination, seedling growth and biochemical responses of Tunisian
squash (Cucurbita maxima Duchesne) germplasm. Plants 11(6):
800. https://doi.org/10.3390/plants11060800
Valero-Galván, J., Garza-Vallejo, G.I., Quiñónez-Martínez, M., & González-Fernández, R.
(2024). Seed morphometry and NaCl and sucrose effect on germination rates and
phytochemicals in sotol (Dasylirion acrotrichum) from the Chihuahua state, Mexico. Journal of
the Professional Association for Cactus Development, 26: 87–
106. https://doi.org/10.56890/jpacd.v26i.554
Viera-Santos, C.L., Campos, A., Azevedo, H., & Caldeira, G. (2001). In situ and in vitro senescence
induced by KCl stress: nutritional imbalance, lipid peroxidation and antioxidant
metabolism. Journal of Experimental Botany 52(355): 351–360.
https://doi.org/10.1093/jexbot/52.355.351
Zhao, C., Zhang, H., Song, C., Zhu, J.K., & Shabala, S. (2020). Mechanisms of plant responses and
adaptation to soil salinity. The Innovation 1(1):
100017. https://doi.org/10.1016/j.xinn.2020.100017
2026 TECNOCIENCIA CHIHUAHUA.
Esta obra está bajo la Licencia Creative Commons Atribución No Comercial 4.0 Internacional.
https://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/