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TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XIX (2025): enero-diciembre, e1802
https://revistascientificas.uach.mx/index.php/tecnociencia
ISSN-e: 2683-3360
Artículo Científico
Composición química y actividad antioxidante en
estambres de cuatro especies de Cylindropuntia:
influencia del solvente de extracción
Chemical Composition and Antioxidant Activity of Stamens from
Four Cylindropuntia Species: Influence of the Extraction Solvent
*Correspondencia: jose.valero@uacj.mx (José Valero-Galván)
DOI: https://doi.org/10.54167/tch.v19i2.1802
Recibido: 27 de diciembre de 2024; Aceptado: 21 de mayo de 2025
Publicado por la Universidad Autónoma de Chihuahua, a través de la Dirección de Investigación y Posgrado.
Editor de Sección: Dr. René Renato Balandrán-Quintana
Resumen
Actualmente, la información sobre la composición química de las especies del género Cylindropuntia
es limitada. Generar mayor conocimiento sobre estas especies es de interés para identificar
diferencias entre especies y determinar su potencial antioxidante y composición química. El objetivo
de este estudio fue evaluar la composición química y la actividad antioxidante de los estambres de
cuatro especies de Cylindropuntia, utilizando tres solventes acuosos para la extracción y la
cuantificación espectrofotométrica de pigmentos, compuestos fenólicos, flavonoides, azúcares
reductores y actividad antioxidante. El metanol fue el solvente más eficiente en la extracción de
clorofilas (b, c, d y total), carotenoides, betacianinas, betaxantinas y betalaínas, en comparación con
la acetona y el etanol. C. spinosior presentó las mayores concentraciones de xantofilas (29.37 mg·g—1),
betacianinas (0.190 mg·g—1), betaxantinas (0.080 mg·g—1) y betalaínas (0.27 mg·g—1), mientras C.
imbricata destacó por su alto contenido de clorofila a (49.51 mg·g—1), clorofila d (15.24 mg·g—1), clorofila
total (89.10 mg·g—1), compuestos fenólicos (10.97 mg EAG·g —1) y una mayor actividad antioxidante
medida por FRAP (22.56 mmol ET·g—1). Por otro lado, C. kleiniae presentó la mayor concentración de
carotenoides (12.14 mg·g —1), azúcares reductores (136.89 mg EG·g—1) y actividad antioxidante
medida por DPPH (23.84 M ET·g—1). En contraste, C. arbuscula presentó los niveles más bajos en la
mayoría de los compuestos analizados. Los estambres de las especies C. spinosior y C. imbricata
Kevin Alexis Madrigal Hernández1, Raquel González-Fernández1, José Valero-Galván 1*
1 Departamento de Ciencias Químico-Biológicas, Instituto de Ciencias Biomédicas, Universidad autónoma
de Ciudad Juárez; Ciudad Juárez, Chihuahua, México. Av. Plutarco Elías Calles #1210 FOVISSSTE
Chamizal, Ciudad Juárez, Chihuahua, México, C.P. 32310.
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emergen como fuentes potenciales de compuestos bioactivos, lo que resalta su relevancia para
futuras investigaciones en el ámbito fitoquímico, farmacológico y nutricional.
Palabras clave: cactáceas, pigmentos vegetales, antioxidantes naturales, flavonoides y fenoles,
análisis discriminante.
Abstract
Currently, information on the chemical composition of species within the Cylindropuntia genus is
limited. Expanding knowledge about these species is essential for identifying interspecies
differences and determining their antioxidant potential and chemical composition. This study aimed
to evaluate the chemical composition and antioxidant activity of stamens from four Cylindropuntia
species using three aqueous solvents for extraction and spectrophotometric quantification of
pigments, phenolic compounds, flavonoids, reducing sugars, and antioxidant activity. Among the
solvents tested, methanol was the most efficient for extracting chlorophylls (b, c, d, and total),
carotenoids, betacyanins, betaxanthins, and betalains, compared to acetone and ethanol. C. spinosior
exhibited the highest concentrations of xanthophylls (29.37 mg·g—¹), betacyanins (0.190 mg·g—¹),
betaxanthins (0.080 mg·g—¹), and betalains (0.27 mg·g—¹), while C. imbricata stood out for its high
content of chlorophyll a (49.51 mg·g—¹), chlorophyll d (15.24 mg·g—¹), total chlorophyll (89.10 mg·g—
¹), phenolic compounds (10.97 mg GAE·g—¹), and potent antioxidant activity measured by FRAP
(22.56 mmol TE·g—¹). On the other hand, C. kleiniae exhibited the highest concentration of carotenoids
(12.14 mg·g—¹), reducing sugars (136.89 mg EG·g—¹), and a higher antioxidant activity measured by
DPPH (23.84 mmol TE·g—¹). In contrast, C. arbuscula showed the lowest levels across most analyzed
compounds. The stamens of C. spinosior and C. imbricata emerge as promising sources of bioactive
compounds, underscoring their relevance for future research in phytochemistry, pharmacology, and
nutrition.
Keywords: cacti, plant pigments, natural antioxidants, flavonoids and phenols, discriminant
analysis.
1. Introducción
Las cactáceas son plantas suculentas y dicotiledóneas pertenecientes al orden Caryophyllales
(Jiménez-Sierra, 2011). Destacan por su adaptación a ambientes áridos y semiáridos, resultado de su
naturaleza halófila y xerófila, así como de su metabolismo fotosintético C4 o CAM (Santos-Díaz y
Camarena-Rangel, 2019). Dentro de la familia Cactaceae se han identificado entre 110 y 124 géneros,
que en conjunto comprenden alrededor de 1500 a 1600 especies (de Castro Campos Pinto y Scio,
2014). Su distribución abarca todo el continente americano, con su mayor diversidad concentrada en
Norteamérica, especialmente en los desiertos de Chihuahua, Sonora y Mojave (Fontenele et al., 2021).
En menor medida, también se encuentran en Argentina, Bolivia, Chile, Perú y Brasil (Ortega-Baes y
Godínez-Álvarez, 2006).
En México, las cactáceas tienen un gran valor económico, social, cultural y ecológico, por lo que se
utilizan en diversos ámbitos, como la alimentación, la producción de forraje, la delimitación de
terrenos mediante cercos vivos, la ornamentación, las ceremonias religiosas y la medicina
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tradicional. Sin embargo, estas especies han sufrido una disminución en sus poblaciones debido a la
recolección y el comercio ilegal, así como al cambio de uso de suelo y la industrialización de sus
hábitats naturales (Jiménez-Sierra, 2011).
El género Cylindropuntia, conocido coloquialmente como “choyas”, pertenece a la subfamilia
Opuntioideae y se caracteriza por sus tallos cilíndricos, articulados y glabros, con areolas que
contienen gloquidios y espinas. Sus flores pueden presentarse solitarias o agrupadas, con podarios
en el pericarpelo (Balandrán-Quintana et al., 2018; Malusa et al., 2014). Con un registro de 35 especies,
21 subespecies y 10 híbridos, este género exhibe una amplia distribución geográfica que abarca el
sur y centro de los Estados Unidos, el norte de México, así como Sudamérica, con presencia
destacada en Chile, Ecuador y Perú (Hunt, 2016; Guzmán et al., 2003). En México, las especies más
abundantes incluyen C. imbricata, C. leptocaulis, C. spinosior y C. kleiniae (Guzmán et al., 2003). Estas
plantas se emplean como cercos vivos para delimitar terrenos y sus cladodios secos en la elaboración
de artesanías (Bustamante y Burquez, 2005).
Desde el punto de vista fitoquímico, se ha reportado que las raíces de C. cholla presentan actividad
antimicrobiana atribuida a inhibidores enzimáticos (Galván-Gutiérrez, 2019), mientras que los frutos
y semillas contienen una elevada actividad antioxidante, asociada con su alto contenido de
compuestos fenólicos (Reyes-Corral et al., 2022). No obstante, existe información limitada sobre la
composición fitoquímica y la actividad antioxidante de los estambres en el género Cylindropuntia.
Dado que los pigmentos y metabolitos secundarios en estructuras florales pueden desempeñar un
papel determinante en la defensa antioxidante, su análisis en el género Cylindropuntia representa una
oportunidad para ampliar el conocimiento sobre los compuestos bioactivos de las flores en este
género.
En la última década, ha crecido el interés por identificar fuentes naturales de compuestos bioactivos
con capacidad antioxidante, debido a su potencial para mitigar el daño celular provocado por
especies reactivas del oxígeno y radicales libres, factores vinculados a enfermedades crónicas (Hoang
y Kim, 2021; Grodzicki y Dziendzikowska, 2020; Chandrasekara y Shahidi, 2018; Rangel-Huerta et
al., 2015). Dentro de la familia Cactaceae, diversas especies destacan por su riqueza en pigmentos,
compuestos fenólicos, carotenoides, betalaínas, fibras y mucílagos, que les confieren una notable
capacidad antioxidante y protección frente al estrés ambiental (Márquez-Rangel et al., 2025; Agostini-
Costa, 2022; Aispuro-Hernández et al., 2022; Das et al., 2021). La variabilidad en la composición
química entre diferentes tejidos y especies responde a factores ecológicos y evolutivos (Agostini-
Costa, 2022), lo que subraya su relevancia en la ecología de ecosistemas áridos y su potencial en
aplicaciones farmacológicas y nutracéuticas. Investigaciones recientes han destacado sus
propiedades antioxidantes, antiinflamatorias y anticancerígenas (Martinez et al., 2024; Das et al.,
2021; Ramírez-Rodríguez et al., 2020), reforzando el interés en los recursos naturales como alternativa
sostenible a los antioxidantes sintéticos, cuyo impacto en la seguridad y efectos secundarios sigue en
evaluación.
La extracción de compuestos bioactivos es relevante en la industria farmacéutica, alimentaria y
cosmética (Martinez et al., 2024; Das et al., 2021; Ramírez-Rodríguez et al., 2020). Su eficacia depende
en gran medida del solvente utilizado, cuya capacidad para disolver y extraer los compuestos de
interés varía según sus características químicas (Ngo et al., 2017; Nagarajan et al., 2016). Propiedades
como la polaridad, el punto de ebullición y la capacidad de solubilización determinan la cantidad y
calidad de los compuestos obtenidos (Ngo et al., 2017; Nagarajan et al., 2016). Así, la elección
adecuada del solvente maximiza el rendimiento de extracción, ya que los solventes polares favorecen
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la extracción de compuestos hidrofílicos, mientras que los solventes menos polares son más eficaces
en la extracción de compuestos lipofílicos (Ngo et al., 2017; Nagarajan et al., 2016; Arvayo-Enríquez
et al., 2013; Ritchie, 2008; Lichtenthaler, 1987).
Este estudio tuvo como objetivo evaluar la composición química y la actividad antioxidante de los
estambres de cuatro especies del género Cylindropuntia, mediante la extracción con tres solventes
acuosos y la cuantificación espectrofotométrica de pigmentos, compuestos fenólicos, flavonoides,
azúcares reductores y actividad antioxidante. Asimismo, se buscó identificar diferencias entre
especies y determinar la combinación de solvente y especie con el mayor contenido de compuestos
bioactivos y actividad antioxidante, con el fin de aportar información relevante sobre su potencial
fitoquímico, funcional y relevancia industrial por su uso como colorantes naturales.
2. Materiales y métodos
Material biológico y sitio de recolección
En el presente estudio se utilizó un diseño factorial para evaluar el efecto de tres solventes
acuosos (metanol al 80 %, etanol al 80 % y acetona al 80 %, v/v) y la variación interespecífica en la
extracción de pigmentos, compuestos fitoquímicos y la actividad antioxidante en estambres, los
cuales incluyeron los filamentos y las anteras que contienen el polen, de cuatro especies del género
Cylindropuntia.
La recolección de las flores se realizó a inicios de abril de 2023 en Ciudad Juárez, Chihuahua, México,
en especies nativas de la región. Para la identificación taxonómica, se seleccionaron aleatoriamente
cinco individuos por especie y se recolectaron tres tallos y frutos de cada uno, siguiendo la guía de
Deltoro-Torró et al. (2014).
Las flores de C. kleiniae y C. imbricata se recolectaron en el Parque Central Hermanos Escobar
(31.687157, 106.427388), las de C. spinosior en el jardín botánico del Instituto de Ciencias Biomédicas
de la Universidad Autónoma de Ciudad Juárez (31.746881, 106.442465), y las de C. arbuscula en el
Parque Jardín del Valle (31.661430, 106.370235).
El protocolo de recolección se adaptó de González-Fernández et al. (2023), monitoreando cada 10
días entre el 1 de marzo y el 30 de mayo de 2023. Se seleccionaron dos flores al azar por individuo,
sumando un total de diez flores por especie. Para evitar la contaminación del polen por insectos
herbívoros y polinizadores, la colecta se realizó en antesis temprana. La recolección se llevó a cabo
en diferentes ramas del mismo individuo, entre las 7:00 y 10:00 h.
Las muestras se depositaron individualmente en bolsas de polietileno herméticas sin solución
fijadora, ya que en colectas previas se observó que las flores pueden abrirse tras el corte sin
alteraciones en sus rasgos polínicos. Una hora después de la recolección, las muestras fueron
transportadas al laboratorio, donde se cortaron longitudinalmente con un bisturí para separar los
estambres. Posteriormente, las muestras se homogeneizaron en un mortero y se sometieron a un
secado a 28 °C durante 96 h en una incubadora (Thermo, Alemania). Finalmente, el material seco fue
pulverizado manualmente con un pistilo, colocado en sobres de papel identificados y almacenado a
27 °C por un máximo de 24 h antes de su análisis.
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Preparación de los extractos
Para cada especie, se prepararon tres extractos estándar utilizando la técnica de extracción
sólido-líquido con tres solventes acuosos al 80 % (v/v): metanol (Deq, México), etanol (Civeq, México)
y acetona (Deq, México). La extracción se llevó a cabo siguiendo la metodología de Reyes-Corral et
al. (2022).
Se pesaron 0.03 g de material seco de cada especie y se colocaron en un mortero. Posteriormente, se
añadieron 1.5 mL de la solución de metanol al 80 % (v/v) y se homogeneizó con un pistilo hasta
obtener una mezcla uniforme. La solución resultante se transfirió a tubos nuevos de 1.5 mL y se
mantuvo a 4 °C durante 12 h en oscuridad. Luego, los extractos fueron centrifugados a 5000 rpm
durante 3 min a 4 °C en una centrífuga (Eppendorf, Estados Unidos). El sobrenadante se recuperó y
se almacenó a 4 °C hasta su análisis.
Este procedimiento se repitió utilizando soluciones acuosas de etanol al 80 % (v/v) y acetona al 80 %
(v/v), asegurando condiciones idénticas para cada solvente.
Cuantificación de pigmentos
Se tomaron 75 μL de cada uno de los doce extractos y, por triplicado, se depositaron en
celdas independientes dentro de una microplaca de 96 pocillos (Corning, México). Se midió la
absorbancia de la longitud de onda a 470 nm, 490 nm, 547 nm, 630 nm, 632 nm, 647 nm, 652 nm, 649
nm, 664 nm, 665 nm, 691 nm y 696 nm en un espectrofotómetro acoplado a un lector de microplacas
(Hercules®, USA) usando el programa Microplate Manager 6.0 (Bio-Rad, USA).
Como blancos, se usaron los mismos solventes usados en la extracción. Para la cuantificación de
clorofilas (a, b, c, d y total), xantofilas y carotenoides, se aplicaron las ecuaciones de Ritchie (2008) y
Lichtenthaler (1987). La cuantificación de betacianinas, betaxantinas y betalaínas totales se realizó
mediante las ecuaciones propuestas por Castellanos-Santiago y Yahia (2008).
Cuantificación de fenólicos
El contenido total de compuestos fenólicos y flavonoides se cuantificó mediante el método
de Folin-Ciocalteu y el método de cloruro de aluminio, respectivamente, con modificaciones (Valero-
Galván et al. 2024; Georgé et al. 2005).
Para la cuantificación de compuestos fenólicos, 25 μL de cada uno de los doce extractos, por
triplicado, se depositaron en celdas independientes de una microplaca de 96 pocillos (Corning,
México). A cada extracto se le añadieron 40 μL de Na₂CO₃ al 7.5 % (m/v) (Sigma-Aldrich, México) y
125 μL de reactivo de Folin-Ciocalteu 2 N (Sigma-Aldrich, México). Como blancos, se utilizaron los
mismos solventes empleados en la extracción. La mezcla se incubó durante 15 min a 25 °C en
oscuridad y se midió la absorbancia a 710 nm en un espectrofotómetro (Hercules, USA) acoplado al
software Microplate Manager 6.0 (Bio-Rad, USA).
Para la cuantificación de flavonoides, 62.5 μL de cada uno de los doce extractos estándar, por
triplicado, se depositaron en celdas independientes de una microplaca de 96 pocillos (Corning,
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México). A cada extracto se le añadieron 46.5 μL de NaNO₂ al 5 % (m/v) (Sigma-Aldrich, México),
46.5 μL de AlCl₃ al 10 % (m/v) (Sigma-Aldrich, México) y 62.5 μL de NaOH 0.5 M (Sigma-Aldrich,
México). Como blancos, se utilizaron los mismos solventes empleados en la extracción. Las mezclas
se incubaron durante 15 min a 25 °C en oscuridad y se midió la absorbancia a 510 nm bajo las mismas
condiciones descritas anteriormente.
Para la expresión de los resultados ambos análisis, se realizaron curvas de calibración. En el caso de
los compuestos fenólicos, se utilizó ácido gálico como estándar en concentraciones de 0.0125 a 0.2
mg/mL (Sigma-Aldrich™, México), expresando los resultados como mg de equivalentes de ácido
gálico por gramo de masa seca (mg EAG·g¹). Para los flavonoides, se utilizó catequina como estándar
en un rango de 0.12 a 0.2 mg/mL (Sigma-Aldrich™, México), y los resultados se expresaron como mg
de equivalentes de catequina por gramo de masa seca (mg EC·g—¹).
Cuantificación de azúcares reductores
La determinación de azúcares reductores se realizó siguiendo metodologías previas (Valero-
Galván et al., 2024; Ávila-Núñez et al., 2012). Para su cuantificación, se tomaron 50 μL de cada uno de
los doce extractos y, por triplicado, se depositaron en tubos independientes de 1.5 mL. Luego, se
añadieron 150 μL de una solución de ácido 3,5-dinitrosalicílico (DNS) a 43 mM y la mezcla se incubó a
95 °C durante 5 min en un termoblock (Scientific, USA).
Como blancos, se utilizaron los mismos solventes empleados en la extracción. Posteriormente, los tubos
se enfriaron en hielo durante 2 min y el contenido de cada muestra se transfirió a celdas independientes
en una microplaca de 96 pocillos (Corning, México). La absorbancia se midió a 540 nm en un
espectrofotómetro (Hercules, USA) acoplado al software Microplate Manager 6.0 (Bio-Rad, USA).
Para la cuantificación, se generó una curva de calibración utilizando glucosa como estándar en un rango
de 0.6 a 10 mg/mL (Sigma-Aldrich, México). Los resultados se expresaron como mg de equivalentes de
glucosa por gramo de peso seco (mg EG·g—¹).
Cuantificación de la actividad antioxidante
La actividad antioxidante se evaluó mediante los ensayos de reducción del ion férrico
(FRAP) y captura del radical DPPH (Valero-Galván et al., 2024; Moreno-Escamilla et al., 2017).
Para FRAP, 24 μL de cada extracto, por triplicado, se depositaron en celdas independientes de una
microplaca de 96 pocillos (Corning, México). Como blancos, se emplearon los mismos solventes
utilizados en la extracción. Se añadieron 180 μL de reactivo FRAP (10 mM TPTZ, 300 mM acetato de
sodio y 20 mM FeCl₃; Sigma-Aldrich™, México) y se incubó a 25 °C en oscuridad durante 15 min.
Luego, se midió la absorbancia a 595 nm en un espectrofotómetro (Hercules, USA) con el software
Microplate Manager 6.0 (Bio-Rad, USA).
Para DPPH, 25 μL de cada extracto, por triplicado, se depositaron en celdas independientes de una
microplaca de 96 pocillos (Corning, México). Se añadieron 200 μL de DPPH 190 μM (Sigma-Aldrich,
México) y se incubó a 25 °C en oscuridad durante 15 min. Como blancos, se utilizaron los mismos
solventes empleados en la extracción. La absorbancia se midió a 517 nm en las mismas condiciones
que en FRAP.
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Para la expresión de los resultados, se construyeron curvas de calibración con TROLOX como estándar
en un rango de 8 a 130 μM/mL para FRAP y de 25 a 400 μM/mL para DPPH (Sigma-Aldrich, México).
Los resultados se expresaron en μM de equivalentes de TROLOX por gramo de masa seca (mmol ET·g—
¹).
Análisis Estadístico
Los datos se analizaron utilizando el software estadístico SPSS (IBM®, versión 15.0, EE. UU.)
para evaluar diferencias significativas en el contenido de pigmentos, compuestos fitoquímicos y
actividad antioxidante. Se aplicó un análisis de varianza de dos factores (ANOVA) considerando
como variables independientes el tipo de solvente (metanol, etanol y acetona) y la variación
interespecífica (C. spinosior, C. kleiniae, C. imbricata y C. arbuscula).
Para comparar las medias entre grupos, se realizó una prueba de Tukey con un nivel de significancia
de p ≤ 0.05, considerando tres grupos para el tipo de solvente y cuatro grupos para la variación
interespecífica.
Adicionalmente, se llevó a cabo un análisis de funciones discriminantes canónicas para visualizar la
diferenciación entre especies. Se analizó la varianza explicada y se identificaron las variables que
contribuyen a la separación de las especies dentro del género Cylindropuntia, utilizando los
coeficientes canónicos de correlación de la matriz de estructura.
3. Resultados y discusión
Extracción de los fitoquímicos y actividad antioxidante considerando los
solventes
Con respecto a la extracción de los pigmentos de los estambres, se observó que el etanol al
80 % fue la mejor opción en la extracción de clorofila a (200 % con respecto al metanol); sin embargo,
el metanol al 80 % mostró mayor eficiencia en la extracción de la clorofila b (504 % con respecto al
metanol), de las clorofilas c, d, totales y de carotenoides (357 %, 229 %, 133 % y 188 %,
respectivamente, con respecto a la acetona), y de las betacianinas y betalaínas (160 % y 50 %,
respectivamente, respecto al metanol); finalmente, la acetona al 80 % fue la más eficiente en la
extracción de las xantofilas (125 % respecto al etanol) (Tabla 1). Con respecto a la extracción de los
compuestos fenólicos de los estambres, no se observaron diferencias significativas entre los tres
solventes analizados en la extracción de los fenoles totales, aunque en el caso de la extracción de
flavonoides el metanol al 80 % fue más eficiente (158 % con respecto a la acetona) (Tabla 1). Por otro
lado, la acetona acuosa fue la mejor opción para la extracción de los azúcares reductores (111 % con
respecto a los solventes alcohólicos). Finalmente, para la determinación de la capacidad antioxidante,
la acetona acuosa fue ligeramente más eficiente para la determinada mediante FRAP, mientras que
con los tres solventes se obtuvieron valores similares para el método basado en DPPH (Tabla 1).
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Tabla 1. Evaluación del contenido de fitoquímicos y actividad antioxidante en los estambres de cuatro especies
del género Cylindropuntia, considerando exclusivamente la variación entre los solventes empleados.
Table 1. Evaluation of phytochemicals and antioxidant activity content in the stamens from four Cylindropuntia
species, considering exclusively the variation among the solvents used.
Solvente
Metanol
Etanol
Acetona
15.67±0.93a
31.49±0.93b
28.29±0.93b
22.15±1.60c
4.39±1.60a
14.82±1.60b
21.12±1.93b
14.41±1.93b
5.91±1.93a
15.90±1.65b
9.07±1.65a
6.93±1.65a
74.86±3.52b
59.35±3.52a
55.93±3.52a
10.28±3.78a
10.58±3.78a
13.77±3.78b
15.16±1.74b
8.03±1.74a
8.23±1.74a
0.080±0.00b
0.050±0.00a
0.070±0.00b
0.038±0.00b
0.032±0.00a
0.040±0.00b
0.120±0.00b
0.080±0.00a
0.110±0.00b
9.28±0.49a
9.58±0.49a
8.89±0.49a
3.31±0.30b
2.96±0.30ab
2.10±0.30a
116.25±1.13a
115.08±1.13a
129.42±1.13b
22.25±0.36a
21.04±0.36a
24.40±0.36b
21.89±0.25a
22.17±0.25a
22.13±0.25a
*Datos expresados en mg·g—¹ de masa seca. ** mg de equivalentes de ácido gálico por g de masa seca (mg EAG·g—
¹); *** mg de equivalentes de catequina por g de masa seca (mg EC·g—¹); **** mg equivalentes de glucosa por g
de masa seca (mg EG·g—¹); ***** μM equivalentes de TROLOX por g de masa seca (μM ET·g—¹). Los valores se
presentan como media ± desviación estándar y se analizaron mediante una ANOVA (p < 0.05). Diferentes letras
(a-b) muestran los resultados de la prueba múltiple de Tukey, que indican diferencias signicativas (p < 0.05).
Fuente: Elaboración propia.
Los fitoquímicos de las plantas tienen polaridades variables, por lo que la elección del solvente es
esencial para la mayor cantidad de estos compuestos. La eficiencia de su extracción depende de
factores como la resistencia de la pared celular vegetal, el poder de penetración y las propiedades de
solvatación del solvente, la duración de la extracción y el uso de métodos de disrupción mecánica
(Islam et al., 2024). Las propiedades ideales de un solvente de extracción deben incluir la buena
solubilidad del compuesto de interés y volatilidad a bajas temperaturas, entre otras (Nortjie et al.,
2022). En relación con el agua, los solventes utilizados en este trabajo pueden ordenarse de menor a
mayor polaridad, de la siguiente manera: acetona < etanol < metanol < agua (Sinha et al., 2022). Los
alcoholes, como el metanol y el etanol, son solventes orgánicos polares próticos (contienen un grupo
–OH con un protón ácido que puede formar enlaces de hidrógeno), que se utilizan para extraer una
amplia gama de fitoquímicos desde baja a alta polaridad; ambos son miscibles en agua, inocuos,
previenen el crecimiento microbiano y solo se requiere una pequeña cantidad de calor para que
volatilicen. La acetona es un solvente orgánico polar aprótico (no contiene protones ácidos por lo
que no puede formar enlaces de hidrógeno), con capacidad de extraer moléculas tanto hidrofílicas
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como lipofílicas; es miscible en agua, volátil y también presenta baja toxicidad (Sinha et al., 2022). La
capacidad de extracción de estos tres solventes se puede modular fácilmente añadiendo una pequeña
cantidad de agua, lo que provoca un ligero aumento de su polaridad (Sinha et al., 2022;
Tungmunnithum et al., 2020). Además, cuanto menor sea el tamaño de partícula, mejor será el
resultado de la extracción, ya que aumenta la permeación y la difusión del soluto, mejorando así la
eficiencia de la extracción (Sinha et al., 2022). De los tres solventes, el etanol es el menos tóxico para
los humanos y cumple con los principios de la química verde (Tungmunnithum et al., 2020).
Las clorofilas están compuestas por un núcleo tetrapirrólico que contiene un átomo de Mg central y
una cadena lateral unida al C17, que difiere según el tipo de clorofila (Tamiaki y Kichishima, 2025).
Aunque son moléculas lipofílicas, existe una pequeña diferencia en la polaridad de los distintos tipos
de clorofilas determinada por ciertos grupos funcionales que difieren en el anillo de porfirina. Las
clorofilas a, b y d contienen en el C17 un grupo de fitiloxicarbonilo (–CH2CH2COO-fitilo) y se
diferencian en los siguientes sustituyentes: en el C7 del anillo de porfirina, la clorofila a contiene un
grupo metilo (–CH3) y la clorofila b un grupo formilo (–CHO); por otro lado, en el C3, la clorofila a
contiene un grupo formilo (–CHO) y la clorofila d un grupo vinilo (−CH=CH2). En la clorofila c, el
anillo de porfirina no está reducido y contiene en el C17 un grupo trans-2-carboxietenilo
(−CH=CHCOOH) en lugar del fitol, por lo que se puede considerar menos hidrofóbicas que los otros
tres tipos de clorofilas (Tamiaki y Kichishima, 2025). Por tanto, por su naturaleza química, las
clorofilas son insolubles en agua, pero soluble en solventes orgánicos, siendo los más utilizados para
su extracción el etanol o la acetona (Sun et al., 2024). Si se considera la extracción de las clorofilas
totales en los estambres, en este trabajo el metanol acuoso fue el más eficiente (Tabla 1). Aunque no
existen estudios sobre el contenido de clorofilas en estambres usando diferentes solventes, estos
resultados se sustentan por medio del estudio de Vicaş et al. (2010). Estos autores en un estudio de
los pigmentos de clorofila de hojas de Viscum album (muérdago) utilizando diferentes solventes
(metanol, acetona y N,N-dimetilformamida) a partir de germoplasma rumano, indicaron que el
metanol es el solvente con mayor capacidad de extracción de las clorofilas.
Los carotenoides son tetraterpenoides (contienen 40 átomos de carbono), por lo que son moléculas
lipofílicas, solubles en disolventes orgánicos como la acetona y el etanol, entre otros. Existen
alrededor de 600 carotenoides que pueden clasificarse como carotenos o carotenoides (que presentan
en la estructura sólo átomos de carbono e hidrógeno) y xantofilas, que son compuestos
hidrocarbonados oxigenados que tienen al menos un átomo de oxígeno, grupos hidroxi, ceto, epoxi,
metoxi o carboxilo, por lo que son menos hidrofóbicas que los carotenoides (Butnariu, 2016). En este
estudio el metanol acuoso fue el más eficiente para la extracción de los carotenoides de los estambres
(Tabla 1). Sin embargo, estos resultados contrastan con el contenido de carotenoides encontrado en
hojas de V. album utilizando diferentes solventes (metanol, acetona y N,N-dimetilformamida), donde
la acetona fue el solvente con mayor capacidad de extracción de estos compuestos (Vicaş et al., 2010).
Las betalaínas, que incluyen a las betaxantinas y betacianinas, son pigmentos nitrogenados
derivados de la tirosina solubles en agua. En este análisis, la acetona acuosa fue la más eficiente en
su extracción (Tabla 1). En estudios previos, se ha comprobado que las soluciones hidroalcohólicas
de baja polaridad son más eficaces que los solventes polares para su extracción debido a las débiles
interacciones electrostáticas en estos pigmentos, al producir un efecto inhibidor sobre las enzimas
endógenas en comparación con el agua y al reducir la coextracción de pectina y otras fibras (Eyshi et
al., 2024).
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La extracción de compuestos fenólicos a partir de material vegetal depende principalmente de la
naturaleza de la matriz de la muestra, pero también de las propiedades químicas de los compuestos
fenólicos deseados, como el número de anillos aromáticos y grupos hidroxilo en su estructura,
polaridad y concentración, por lo que es difícil seleccionar un único método para su extracción
(Kumar y Goel, 2019). Las diferencias observadas entre el contenido de los compuestos fenólicos en
diferentes solventes se relacionan principalmente con sus diferentes polaridades, es decir, la
diferente solubilidad de los compuestos individuales en el solvente de extracción. Finalmente, se ha
demostrado que los solventes alcohólicos, a pesar de tener menor polaridad que los acuosos,
disuelve las paredes celulares vegetales de manera más efectiva que el agua, lo que resulta en una
mayor liberación de polifenoles de las células. El metanol es el solvente óptimo para extraer
compuestos polifenólicos debido a su capacidad para inhibir las reacciones de la polifenol oxidasa y
su facilidad de evaporación en comparación con el agua (Tripathi et. al, 2025). En el presente estudio
no se observaron diferencias con respecto al solvente para extraer fenoles, sin embargo, el metanol
fue el mejor solvente para extraer flavonoides (Tabla 1). Estos resultados se respaldan por estudios
previos, donde el metanol fue el solvente más adecuado para la extracción de fenólicos y flavonoides
en diferentes tejidos y plantas (Ammar et al., 2015; Yen et al., 1996; Hertog et al., 1993).
En el presente estudio el etanol acuoso fue el más eficiente en la extracción de los fenoles de los
estambres de las especies de Cylindropuntia, mientras que el metanol acuoso lo fue en la de los
flavonoides (Tabla 1). Estos resultados concuerdan parcialmente con los determinados en estambres
de Crocus sativus L. (azafrán) donde se encontró que el metanol acuoso fue el solvente que obtuvo
los mayores contenidos de compuestos fenólicos y flavonoides (Mamri et al., 2024; Jadouali et al.,
2017). Sin embargo, Mohd-Zin et al. (2021) observaron valores más bajos del contenido de fenólicos
en extractos metanólicos acuosos que los extractos de acetato de etilo acuosos en estambres de
nenúfar (Nymphaeaceae antares).
La actividad antioxidante de los extractos vegetales no se debe evaluar con un solo método debido
a la naturaleza compleja de los fitoquímicos, ya que su determinación depende en gran medida del
mecanismo de reacción involucrado: el ensayo mediante FRAP se basa en una reacción de
transferencia de electrones, mientras que el ensayo mediante DPPH se considera un método mixto
ya que se basa tanto en la transferencia de electrones como de átomos de hidrógeno
(Tungmunnithum et al., 2020). En el presente estudio, los extractos obtenidos con la acetona acuosa
presentaron los valores mayores en la actividad antioxidante determinada por FRAP (Tabla 1). Estos
resultados fueron contrarios a los determinados en estambres de C. sativus donde se encontró que
los extractos metanólicos presentaron los valores más elevados en la actividad antioxidante
determinada por DPPH y FRAP (Jadouali et al., 2017).
Contenido de fitoquímicos y actividad antioxidante considerando a las especies
Con respecto a la determinación de las clorofilas en los estambres, C. imbricata presentó un
contenido mayor de clorofila a, mientras que C. arbuscula el más bajo (Tabla 2). En C. kleiniae se
encontró un contenido mayor de clorofila b, mientras que C. spinosior, C. imbricata y C. arbuscula
presentaron los valores más bajos (Tabla 2). No se observaron diferencias significativas en los niveles
de clorofila c entre los estambres de las cuatro especies (Tabla 2). Para la clorofila d, C. imbricata
mostró un contenido mayor, comparado con el de las otras tres especies (Tabla 2). En el contenido
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total de clorofila, C. imbricata presentó los valores más altos, mientras que C. arbuscula mostró los
más bajos (Tabla 2).
En cuanto al contenido de los carotenoides en los estambres, C. spinosior presentó el contenido mayor
de xantofilas, mientras que C. kleiniae y C. arbuscula el más bajo (Tabla 2). En las especies C. kleiniae,
C. imbricata y C. arbuscula se encontraron contenidos mayores de carotenoides, que en C. spinosior
(Tabla 2). Sin embargo, en esta última especie se encontró un contenido mayor de betacianinas,
betaxantinas y betalaínas en comparación con las otras tres especies, de las cuales C. arbuscula
presentó los valores más bajos (Tabla 2).
Los estambres de las especies C. imbricata, C. kleiniae y C. arbuscula presentaron un contenido más
alto de fenólicos totales, en comparación con los de C. spinosior (Tabla 2). Por otro lado, se obtuvieron
niveles similares en el contenido de flavonoides en las cuatro especies (Tabla 2).
Con respecto a los azúcares reductores, en C. kleiniae se encontró un contenido mayor que en las otras
tres especies, siendo en C. imbricata donde se presentaron los valores más bajos (Tabla 2).
Tabla 2. Evaluación del contenido de fitoquímicos y actividad antioxidante en los estambres de cuatro especies del
género Cylindropuntia, considerando exclusivamente la variación entre las especies.
Table 2. Evaluation of phytochemicals and antioxidant activity content in the stamens from four Cylindropuntia
species, considering exclusively the variation among the species.
Pigmentos
Especies
C. kleiniae
C. spinosior
C. imbricata
C. arbuscula
Clorola a*
18.88±1.07b
19.63±1.07b
49.51±1.07c
12.58±1.07a
Clorola b*
20.08±1.84b
11.86±1.84a
11.38±1.84a
11.83±1.84a
Clorola c*
14.15±2.25a
18.03±2.25a
12.97±2.25a
10.04±2.25a
Clorola d*
9.47±1.91a
8.57±1.91a
15.24±1.91b
9.24±1.91a
Clorola total*
62.57±4.07b
58.11±4.07ab
89.10±4.07c
43.73±4.07a
Xantolas*
2.98±5.71a
29.37±5.71c
10.31±5.71b
3.50±5.71a
Carotenoides*
16.63±1.81b
1.76±1.81a
11.35±1.81b
12.15±1.81b
Betacianinas*
0.020±0.00b
0.190±0.00d
0.050±0.00c
0.010±0.00a
Betaxantinas*
0.020±0.00a
0.080±0.00c
0.030±0.00b
0.010±0.00a
Betalaínas*
0.040±0.00a
0.270±0.00c
0.080±0.00b
0.020±0.00a
Fenólicos **
9.77±0.57b
7.37±0.57a
10.97±0.57b
8.91±0.57ab
Flavonoides ***
2.52±0.31a
2.98±0.31a
2.57±0.31a
3.78±0.31a
Azúcares reductores ****
136.89±1.3d
115.56±1.3b
98.22±1.3a
130.33±1.3c
FRAP *****
24.52±0.42c
21.63±0.42b
26.00±0.42c
18.08±0.42a
DPPH *****
23.84±0.28c
20.86±0.28a
22.56±0.28b
21.01±0.28a
* Datos expresados en mg por g de masa seca (mg·g—¹). ** mg de equivalentes de ácido gálico por g de masa seca
(mg EAG·g—¹); *** mg de equivalentes de catequina por g de masa seca (mg EC·g—¹); **** mg equivalentes de
glucosa por g de masa seca (mg EG·g—¹); ***** μM de equivalentes de TROLOX por g de masa seca (μM ET·g—¹).
Los valores se presentan como media ± desviación estándar y se analizaron mediante una ANOVA (p < 0.05).
Diferentes letras (a-d) muestran los resultados de la prueba múltiple de Tukey, que indican diferencias
signicativas (p < 0.05). Fuente: Elaboración propia.
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La mayor actividad antioxidante determinada por FRAP se encontró en los estambres de C. imbricata
y C. kleiniae, mientras que en los de C. arbuscula se encontró la menor (Tabla 2). Por otro lado, C.
kleiniae mostró la mayor actividad antioxidante determinada por DPPH, mientras que en los de las
especies C. spinosior y C. arbuscula se encontraron los niveles más bajos (Tabla 2).
En el presente estudio se observó una variación interespecífica significativa en los contenidos de
clorofila a (de 12.58 a 49.51 mg·g—¹), clorofila b (de 11.38 a 20.08 mg·g—¹), clorofila d (de 9.24 a 15.24
mg·g—¹), clorofila total (de 43.73 a 89.10 mg·g—¹); xantofilas (de 2.98 a 29.37 mg·g—¹) y carotenoides
(de 1.76 a 16.63 mg·g—¹); betacianinas (de 0.010 a 0.190 mg·g—¹), betaxantinas (de 0.010 a 0.080 mg·g—
¹) y betalaínas (de 0.020 a 0.270 mg·g—¹); fenólicos totales (de 7.37 a 10.97 mg GAE·g—¹); azúcares
reductores (de 98.22 a 136.89 mg EG·g—¹) y actividad antioxidante determinada por FRAP (de 18.08 a
26.00 μM ET·g—¹) y DPPH (de 21.01 a 23.84 μM ET·g—¹) (Tabla 2). Aunque no existen estudios donde
se haya cuantificado el contenido de fitoquímicos en estambres del género Cylindropuntia, en otro
tipo de cactácea como es el del género Opuntia (Acosta, 2023), se observó una variación
interespecífica entre O. microdasys, O. macrocentra, O. engelmannii y O. arenaria en extractos
metanólicos acuosos de estambres en el contenido de clorofila a (de 5.84 a 14.76 mg·g—¹), clorofila b
(de 11.28 a 25.02 mg·g—¹) y clorofila total (de 23.95 a 29.22 mg·g—¹), donde los valores observados
fueron más bajos a los determinados en Cylindropuntia; en el contenido de xantofilas (de 1.66 a 4.85
mg·g—¹) y carotenoides (de 6.04 a 13.91 mg·g—¹), obteniéndose valores similares a los encontrados en
el presente estudio; en el contenido de betacianinas (de 0.14 a 0.22 mg·g—¹), betaxantinas (de 0.010 a
0.02 mg·g—¹) y betalaínas (de 0.16 a 0.23 mg·g—¹), con niveles semejantes a los determinados en el
presente estudio; en el contenido de fenólicos totales (de 5.07 a 6.56 mg GAE·g—¹), con valores más
bajos a los determinados en Cylindropuntia; en el contenido de flavonoides (de 3.66 a 4.81 mg CE·g—
¹), siendo superiores a los determinados en el presente estudio; en el contenido de azúcares
reductores (de 86.14 a 159.28 mg EG·g—¹), siendo valores similares a los de las especies de
Cylindropuntia; y en la actividad antioxidante determinada por FRAP (de 18.46 a 27.47 μM ET·g—¹) y
DPPH (de 10.64 a 17.42 μM ET·g—¹), obteniéndose niveles similares para los determinados por FRAP,
pero inferiores a los determinados por DPPH (Acosta, 2023).
Comparando el contenido de fitoquímicos obtenido en los estambres de Cylindropuntia con los datos
presentados en estudios previos de estambres de otro tipo de plantas, el contenido de carotenoides
fue menor (de 1.76 a 16.63 mg·g—¹) (Tabla 2) que el reportado por Azghandi-Fardaghi et al. (2021) y
Mamri et al. (2024) en estambres de C. sativus (159.14 mg·g—¹ y 152.97 Eq β-C mg·g—¹,
respectivamente). Igualmente, el contenido de los fenoles totales fue menor (de 5.07 a 6.56 mg
GAE·g—¹) (Tabla 2) que lo descrito por Jadouali et al. (2017) (35.69 mg GAE·g—¹) y por Mamri et al.
(2024) (126.31 mg GAE·g—¹) en estambres de C. sativus y por Mohd-Zin et al., (2021) en estambres de
N. antares (118.83 mg GAE·g—¹). El contenido de flavonoides también fue menor en los estambres de
Cylindropuntia (2.52 a 3.78 mg CE·g—¹) (Tabla 2) que lo reportado por Jadouali et al. (2017) (14.10 mg
CE·g—¹) y Mamri et al. (2024) (0.66 mg RE·g—¹) en estambres de C. sativus, por Mohd-Zin et al., (2021)
en estambres de N. antares (82.23 mg CE·g—¹), por Tungmunnithum et al., (2020) en estambres de
Nymphaea lotus L. (loto egipcio blanco) (230.74 mg·g—¹) y por Zhang et al., (2023) en estambres de dos
cultivares de Punica granatum (granada) (99.10 mg RE·g—¹ y 105.97 mg RE·g—¹); sin embargo, en un
estudio más reciente realizado en estambres de C. sativus el contenido de flavonoides fue inferior
(0.66 mg RE·g—¹) (Mamri et al., 2024) que el encontrado en las especies de Cylindropuntia. Finalmente,
los estambres de Cylindropuntia tuvieron una capacidad antioxidante menor determinada por DPPH
que los estambres de Paeonia suffruticosa (peonía arbórea) (207.80 μM ET·g—¹) (Xiang et al., 2019).
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La variabilidad en los contenidos de los fitoquímicos entre los diferentes géneros y especies se asocia
con la adaptación de las plantas, potencialmente impulsada por factores genéticos o ambientales, y
contribuir a una mayor protección contra el estrés oxidativo (Zhang et al., 2023). En general, los
compuestos fenólicos son responsables de muchas interacciones entre las plantas y su entorno
biótico y abiótico (Cárdenas-Sandoval et al., 2012). Asimismo, estos compuestos tienen una
distribución orgánica específica y se acumulan diferencialmente durante la ontogénesis y bajo la
influencia de factores ambientales (Cárdenas-Sandoval et al., 2012; Ayan et al., 2007). Además, la
biosíntesis de compuestos fenólicos está compartimentada subcelularmente y el papel de los
compartimentos celulares no se ha dilucidado totalmente (Cárdenas-Sandoval et al., 2012).
Los resultados mostraron que el contenido en fitoquímicos varió dependiendo de la especie. Estas
diferencias en la concentración de compuestos fenólicos y actividad antioxidante entre las cuatro
especies de Cylindropuntia pueden ser el resultado de procesos de adaptación de las plantas a las
condiciones ambientales y a variaciones genéticas. Varios estudios han mostrado diferencias en las
concentraciones de fitoquímicos entre variedades dentro de un mismo género (Zhang et al., 2023);
también influyen la fase fenológica y las diferentes condiciones de crecimiento de las plantas (Feng
et al., 2024; Zhang et al., 2023; Cárdenas-Sandoval et al., 2012). Otros estudios indican que plantas
desarrolladas en condiciones climáticas más extremas como en altitudes altas hacen que estén
expuestas a intensidades de luz mayores, por lo que un mecanismo para prevenir el daño oxidativo
causado por la fotooxidación podría ser el aumento de la concentración de fenólicos y flavonoides
en ciertos órganos/tejidos de las plantas (Zhang et al., 2023; Cárdenas-Sandoval et al., 2012). Sin
embargo, los resultados del presente trabajo al colectar las muestras en el mismo ambiente sugieren
que las variaciones genéticas de cada especie podrían determinar las cantidades/perfiles de
metabolitos secundarios para las especies estudiadas.
Análisis de funciones discriminantes canónicas
El análisis de funciones discriminantes canónicas mostró que las dos primeras funciones
explicaron el 99.6 % de la variación total en el contenido de pigmentos. La primera función explicó
el 81.8 % de la variación total, la cual se correlación con el contenido de betalaínas, betacianinas y
betaxantinas. La segunda función, explicó el 17.8 % de la variación total y mostró una correlación
con el contenido de la clorofila a y la clorofila total. Este análisis también mostró que las especies que
presentaron perfiles de pigmentos más similares fueron C. kleiniae (1) y C. arbuscula (4), las cuales se
agruparon hacia la parte inferior izquierda del diagrama, mientras que las otras dos especies fueron
más diferentes en los contenidos de pigmento debido a que C. spinosior (2) se separó
significativamente hacia la derecha del diagrama y C. imbricata (3) se separó hacia la parte superior
del diagrama (Fig. 1).
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Figura 1. Diagrama de dispersión de las funciones discriminantes canónicas sobre el contenido de pigmentos
de los estambres y pólenes de C. kleiniae (1), C. spinosior (2), C. imbricata (3) y C. arbuscula (4). Cada punto
representa una muestra individual y su distribución está determinada por las funciones discriminantes. Fuente:
Elaboración propia.
Figure 1. Scatter plot of canonical discriminant functions on the pigment content of stamens and pollens from
C. kleiniae (1), C. spinosior (2), C. imbricata (3), and C. arbuscula (4). Each point represents an individual sample,
and its distribution is determined by the discriminant functions. Source: Own elaboration.
Por otro lado, el análisis de las dos funciones discriminantes canónicas basadas en el contenido de
fitoquímicos y actividad antioxidante explicaron el 92.7 % de la variación total. La primera función
explicó el 69.9 % de la variancia total y se correlacionó con la actividad antioxidante determinada
por DPPH y una correlación negativa con el contenido de flavonoides. La segunda función explicó
el 22.8 % de la variación total y se correlacionó con los azúcares reductores. Ambas funciones
mostraron que las especies que presentan perfiles de fitoquímicos más similares fueron C. spinosior
(2) y C. arbuscula (4), mientras que la más diferente fue C. kleiniae (1), que se separó hacia la parte
superior derecha del diagrama, y C. imbricata (3), que se separó hacia la parte inferior derecha del
diagrama (Fig. 2).
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Figura 2. Diagrama de dispersión de las funciones discriminantes canónicas sobre el contenido de fitoquímicos
y evaluación de la actividad antioxidante de los estambres y pólenes de C. kleiniae (1), C. spinosior (2), C. imbricata
(3) y C. arbuscula (4). Cada punto representa una muestra individual y su distribución está determinada por las
funciones discriminantes. Fuente: Elaboración propia.
Figure 2. Scatter plot of canonical discriminant functions on the phytochemical content and antioxidant activity
assessment of stamens and pollen from C. kleiniae (1), C. spinosior (2), C. imbricata (3), and C. arbuscula (4). Each
point represents an individual sample, and its distribution is determined by the discriminant functions. Source:
Own elaboration.
Las Figs. 1 y 2, confirman las diferencias interespecíficas en la composición de fitoquímicos y
capacidad antioxidante de los estambres de las cuatro especies estudiadas, permitiendo una mejor
comprensión de las adaptaciones ecológicas y evolutivas de estas especies. Dentro de las variables
que mostraron una mayor correlación a la diferenciación de las especies en los contenidos de los
fitoquímicos fueron las clorofilas a y totales, betalaínas, flavonoides, azúcares reductores y la
actividad antioxidante determinada por DPPH.
C. imbricata presentó los valores más altos en el contenido de estas dos clorofilas seguido de C.
spinosior, C. kleiniae y C. arbuscula. Las clorofilas, aunque su función principal es la fotosíntesis en las
hojas, también pueden estar presentes en los pétalos y el polen, donde contribuyen a la absorción de
luz y posiblemente a la protección contra el estrés lumínico (Narbona et al., 2014; Manrique-Reol,
2003). Posiblemente, los estambres de C. imbricata presenten mejores mecanismos para captar con
mayor eficiencia la absorción de luz y posiblemente en la protección contra el estrés lumínico.
Asimismo, C. spinosior presentó los valores más elevados en el contenido de betalaínas, seguida de
C. imbricata, C. kleiniae y, por último, de C. arbuscula. Las betalaínas, además de su función
antioxidante, influyen en la coloración de las flores y en la atracción polinizadores (Stintzing y Carle,
2004). Posiblemente, los estambres de C. spinosior presenten mejores mecanismos para intensificar la
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coloración de los estambres para atraer más polinizadores a sus flores. El contenido de fenoles y la
actividad antioxidante determinada por DPPH fue superior en C. kleiniae, seguido de C. imbricata, C.
arbuscula y, por último, de C. spinosior. Los compuestos fenólicos en los estambres podrían estar
protegiendo al polen del daño por radiación UV y estrés oxidativo (Taylor y Hepler, 1997). También,
el contenido de azúcares reductores fue más alto en los estambres de C. kleiniae, seguido de C.
arbuscula, C. spinosior y C. imbricata. Los azúcares reductores proporcionan energía para la
germinación del polen y el crecimiento del tubo polínico (Pacini, 1996).
Algunos estudios previos han utilizado los análisis discriminantes para dilucidar la similitud entre
poblaciones o especies y el patrón de estas asociaciones a las variables medidas como el contenido
de fitoquímicos y la actividad antioxidante (González-Fernández et al., 2025, Reyes-Corral et al., 2022;
Berrabah et al., 2019). Concretamente, el análisis de funciones discriminantes encuentra funciones
lineales de variables cuantitativas que separan al máximo grupos de individuos (procedencias)
mientras mantienen la variación dentro de las procedencias lo más pequeña posible. Este enfoque
distingue varias funciones discriminantes canónicas no correlacionadas. Se trata de combinaciones
lineales de las variables originales que separan mejor las medias de los grupos de observaciones en
relación con la variación dentro del grupo. Sin embargo, los resultados se estos estudios son
complicados de comparar con los resultados obtenidos en el presente estudio, debido a que no
pertenecen a las mismas especies, tipos de solventes o bien diferente tipo de análisis discriminante.
Los resultados obtenidos en el presente estudio fueron semejantes a los determinados por González-
Fernández et al. (2025) sobre la caracterización del contenido de fitoquímicos y actividad
antioxidante de semillas de Echinocereus stramineus (Cactaceae) en el municipio de Ciudad Juárez,
Chihuahua, México, encontrándose que las dos primeras funciones del análisis discriminante
canónico explicaron el 99.2 % de la varianza total y las variables que correlacionaron con estas dos
primeras funciones también fueron los azúcares reductores, flavonoides y las actividad antioxidante
determinada por DPPH. Reyes-Corral et al. (2022) en un estudio de la caracterización morfológica,
germinación, contenido fitoquímico y actividad antioxidante en semillas de tres especies del género
Cylindropuntia procedentes del municipio de Ciudad Juárez, Chihuahua, México, mencionaron que
los dos primeros componentes principales explicaron el 99.9 % de la varianza total y dentro de las
variables fitoquímicas que aportaron a la variación interespecífica de las tres especies analizadas
fueron el contenido de proteína y la actividad antioxidante determinada por DPPH. Berrabah et al.
(2019) en un estudio de la composición fitoquímica y propiedades antioxidantes de las flores de
Opuntia ficus-indica a partir de germoplasma argelino, indicaron que las dos primeras funciones
discriminantes explicaron el 90 % de la variancia total, mientras que las variables que correlacionaron
para separar a las poblaciones estudiadas para ambas funciones también fueron los azúcares solubles
y la actividad antioxidante. Estos resultados de alguna forma soportan los resultados obtenidos en
el presente estudio.
4. Conclusiones
Los resultados obtenidos en el presente estudio constituyen la primera información sobre la
composición fitoquímica y la actividad antioxidante de los estambres de cuatro especies del género
Cylindropuntia. Se demostró que el solvente metanólico acuoso fue el más eficiente para extraer
clorofilas, carotenoides, betalaínas y flavonoides, mientras que el acetónico acuoso fue el mejor para
extraer azúcares reductores. El análisis de funciones discriminantes canónicas mostró que las
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especies que presentan perfiles de pigmentos más similares fueron C. kleiniae y C. arbuscula, mientras
que las más distantes fueron C. spinosior (2) y C. imbricata (3). Dentro de las variables que mostraron
una mayor correlación a la diferenciación de las especies en los contenidos de los pigmentos fueron
el contenido de betalaínas, clorofila a y total. Sin embargo, C. spinosior (2) y C. arbuscula presentaron
los perfiles de fitoquímicos más similares, mientras que los más diferentes fueros C. kleiniae y C.
imbricata. Las variables que presentaron un mayor peso en esta diferenciación fueron el contenido
de flavonoides, azúcares reductores y la actividad antioxidante determinada por DPPH. En general,
nuestros hallazgos sugieren que los estambres de C. imbricata y C. spinosior podrían constituir una
buena fuente de sustancias biológicamente activas. Estos resultados también sientan las bases para
realizar estudios más detallados para la identificación y cuantificación de los metabolitos
secundarios más abundantes que estas especies producen en los estambres para dar esas aplicaciones
en un futuro.
Agradecimientos
La presente investigación fue realizada con el apoyo de la infraestructura de los laboratorios del
Departamento de Ciencias Químicos Biológicas del Instituto de Ciencias Biomédicas de la
Universidad Autónoma de Ciudad Juárez.
Conflicto de interés
Los autores no tienen conflictos de intereses en la publicación de estos resultados.
5. Referencias
Acosta, Z.J. (2024). Análisis fitoquímico, antioxidante y caracterización del polen de Opuntia
microdasys, O. macrocentra, O. engelmannii y O. arenaria de la sierra de Samalayuca, Tesis de
pregrado, Universidad Autónoma de Ciudad Juárez, Ciudad Juárez, Chihuahua, México.
Agostini-Costa, T.S. (2022). Genetic and environment effects on bioactive compounds of Opuntia
cacti–a review. Journal of Food Composition and Analysis 109: 104514.
https://doi.org/10.1016/j.jfca.2022.104514
Aispuro-Hernández, E., Vergara-Jiménez, M. J., Cárdenas-Torres, F. I., Martínez-Téllez, M. A., &
Ontiveros, N. (2022). Cactaceae plants as sources of active bioavailable phytochemicals. Food &
Function, 13(19): 9720-9733. https://doi.org/10.1039/D2FO01863B
Ammar, I., Ennouri, M., & Attia, H. (2015). Phenolic content and antioxidant activity of cactus
(Opuntia ficus-indica L.) flowers are modified according to the extraction method. Industrial Crops
and Products 64: 97-104. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2014.11.030
Arvayo-Enríquez, H., Mondaca-Fernández, I., Gortárez-Moroyoqui, P., López-Cervantes, J., &
Rodríguez-Ramírez, R. (2013). Carotenoids extraction and quantification: a review. Analytical
Methods, 5(12): 2916-2924. https://doi.org/10.1039/C3AY26295B
Ávila-Núñez, R., Rivas-Pérez, B., Hernández-Motzezak, R., & Chirinos, M. (2012). Contenido de
azúcares totales, reductores y no reductores en Agave cocui Trelease. Multiciencias 12(2): 129-135.
https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=90424216002
18
Madrigal-Hernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XIX (2025): enero-diciembre, e1802
Ayan, A.K., Yanar, O., Cirak, C., & Bilgener, M. (2007). Morphogenetic and diurnal variation of total
phenols in some Hypericum species from Turkey during their phenological cycles. Bangladesh
Journal of Botany 36(1): 39-46. https://doi.org/10.3329/bjb.v36i1.1547
Azghandi-Fardaghi, A., Es-haghi, A., Feizy, J., & Lakshmipathy, R. (2021). Antioxidant capacity and
chemical composition of different parts of saffron flowers. Journal of Food and Bioprocess
Engineering 4(1): 69-74. https://doi.org/10.22059/jfabe.2021.316326.1078
Balandrán-Quintana, R. R., González-León, A., Islas-Rubio, A. R., Madera-Santana, T.J., Soto-Valdez,
H., Mercado-Ruiz, J. N., Peralta, E., Robles-Osuna, L.E., Vásquez-Lara, F., Carvallo-Ruiz, T.,
Granados-Nevárez, M. C., Martínez-Núñez, Y.Y., & Montoya-Ballesteros, L. C. (2018). An
overview of cholla (Cylindropuntia spp.) from Sonora, Mexico. Journal of the Professional Association
for Cactus Development 20: 162-177. https://doi.org/10.56890/jpacd.v20i.35
Berrabah, H., Taïbi, K., Abderrahim, L. A., & Boussaid, M. (2019). Phytochemical composition and
antioxidant properties of prickly pear (Opuntia ficus-indica L.) flowers from the Algerian
germplasm. Food Measurement and Characterization 13: 1166-1174. https://doi.org/10.1007/s11694-
019-00032-8
Bustamante, E., & Burquez, A. (2005). Fenología y biología reproductiva de las cactáceas columnares.
Cactaceas y Suculentas mexicanas 50(3): 68-88.
https://web.ecologia.unam.mx/cactsucmex/CACTACEAS2005_3.pdf
Butnariu, M. (2016). Methods of analysis (extraction, separation, identification and quantification) of
carotenoids from natural products. Journal of Ecosystems & Ecography 6: 193.
https://doi.org/10.4172/2157-7625.1000193
Cardenas-Sandoval, B.A., López-Laredo, A.R., Martínez-Bonfil, B.P., Bermúdez-Torres, K., & Trejo-
Tapia, G. (2012). Advances in the phytochemistry of Cuphea aequipetala, C. aequipetala var. hispida
and C. lanceolata: Extraction and quantification of phenolic compounds and antioxidant
activity. Revista mexicana de ingeniería química, 11(3): 401-413.
http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S166527382012000300005&lng=es&
tlng=en
Castellanos-Santiago, E., & Yahia, E.M. (2008). Identification and quantification of betalains from the
fruits of 10 mexican prickly pear cultivars by high-performance liquid chromatography and
electrospray ionization mass spectrometry. Journal of Agricultural and Food Chemistry 56(14): 5758-
5764. https://doi.org/10.1021/jf800362t
Chandrasekara, A., & Shahidi, F. (2018). Herbal beverages: Bioactive compounds and their role in
disease risk reduction - A review. Journal of Traditional and Complementary Medicine 8(4): 451–458.
https://doi.org/10.1016/j.jtcme.2017.08.006
Das, G., Lim, K.J., Tantengco, O.A.G., Carag, H.M., Gonçalves, S., Romano, A., Das, S.K., Coy-
Barrera, E., Shin, H.S., Gutiérrez-Grijalva, E.P., Heredia, J.B., & Patra, J.K. (2021). Cactus:
Chemical, nutraceutical composition and potential bio-pharmacological properties. Phytotherapy
Research: PTR 35(3): 1248-1283. https://doi.org/10.1002/ptr.6889
de Castro Campos Pinto, N., & Scio, E. (2014). The biological activities and chemical composition of
Pereskia species (Cactaceae) a review. Plant Foods for Human Nutrition 69(3): 189-95.
https://doi.org/10.1007/s11130-014-0423-z
Deltoro-Torró, V., Gómez-Serrano, M.A., Laguna-Lumbreras, E., & Novoa-Pérez, A. 2014. Bases para
el control del cactus invasor Cylindropuntia pallida. Colección Manuales Técnicos de
Biodiversidad, 5. Conselleria d’Infraestructures, Territori i Medi Ambient. GeneralitatValenciana.
Valencia, España. https://www.orihuela.es/wp-
content/uploads/2016/12/control_cactus_invasor.pdf
19
Madrigal-Hernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XIX (2025): enero-diciembre, e1802
Eyshi, S., Ghareaghajlou, N., Afshar Mogaddam, M.R., & Ghasempour, Z. (2024). Red beet betalains
extraction process: A comprehensive review of methods, applications, and physicochemical
properties. Food Science & Nutrition 12(11): 8540-8558. https://doi.org/10.1002/fsn3.4458
Feng, Y., Zhao, K., Li, J., Wang, M., Yin, H., Fan, Z., Li, X., & Liu, W. (2024). Transcriptome and
pigment analyses provide insights into carotenoids and flavonoids biosynthesis in Camellia
nitidissima stamens. Horticulturae 10(4): 420. https://doi.org/10.3390/horticulturae10040420
Fontenele, R.S., Salywon, A.M., Majure, L.C., Cobb, I.N., Bhaskara, A., Avalos-Calleros, J.A.,
Argüello-Astorga, G.R., Schmidlin, K., Khalifeh, A., Smith, K., Schreck, J., Lund, M.C., Köhler,
M., Wojciechowski, M.F., Hodgson, W.C., Puente-Martinez, R., Van-Doorslaer, K., Kumari, S.,
Oyeniran, K.A., & Varsani, A. (2021). New world Cactaceae plants harbor diverse Geminiviruses.
Viruses 13(4): 694. https://doi.org/10.3390/v13040694
Galván-Gutiérrez, R.A. (2019). Aislamiento de inhibidores de la ureasa presentes en un extracto
metanólico de raíz de cholla (Cylindropuntia cholla) por cromatografía en columna. Tesis.
Universidad Abierta y a Distancia de México, Repositorio institucional de la Univer.
http://www.repositorio.unadmexico.mx:8080/xmlui/handle/123456789/182
Georgé, S., Brat, P., Alter, P., & Amiot, M.J. (2005). Rapid determination of polyphenols and vitamin
C in plant-derived products. Journal of Agricultural and Food Chemistry 53(5): 1370-1373.
https://doi.org/10.1021/jf048396b
González-Fernández, R., Quiñones-Martínez, M., & Valero-Galván, J. (2023). Variaciones
morfológicas en el fruto y semillas de cuatro estadios del fruto de Cylindropuntia spinosior
(Cactaceae). TECNOCIENCIA Chihuahua, 17(3): e1184. https://doi.org/10.54167/tch.v17i3.1184
Gonzalez-Fernandez, R., Quinones-Martinez, M., Osuna-Avila, P., & Valero-Galvan, J. (2025). Study
on fruit seed morphology and morphometry, seed phytochemicals, and germination
characterization in three populations of Echinocereus stramineus (Cactaceae) at Ciudad Juarez
Municipality, Chihuahua, Mexico. Journal of the Professional Association for Cactus Development 27:
35-55. https://doi.org/10.56890/jpacd.v27i.574
Grodzicki, W., & Dziendzikowska, K. (2020). The Role of selected bioactive compounds in the
prevention of Alzheimer's Disease. Antioxidants (Basel, Switzerland) 9(3): 229.
https://doi.org/10.3390/antiox9030229
Guzmán, U., Arias, S., & Dávila-Aranda, P.D. (2003). Catálogo cactáceas mexicanas. Universidad
Autónoma de México. CONABIO, México. https://www.worldcat.org/es/title/catalogo-de-
cactaceas-mexicanas/oclc/948238461
Hertog, M.G.L., Hollman, P.C.H., & Van de Putte, B. (1993). Content of potentially anticarcinogenic
flavonoids of tea infusions, wines, and fruit juices. Journal of Agricultural and Food Chemistry 41(8):
1242-1246. https://doi.org/10.1021/jf00032a015
Hoang, T., & Kim, J. (2021). Phytonutrient supplements and metabolic biomarkers of cardiovascular
disease: An umbrella review of meta-analyses of clinical trials. Phytotherapy Research: PTR 35(8):
4171-4182. https://doi.org/10.1002/ptr.7079
Hunt, D. (2016). CITES. Cactaceae Checklist (3rd ed.). Royal Botanic Gardens Kew & International
Organization for Succulent Plant Study. https://www.kew.org/sites/default/files/2019-
02/CITES%20Cactaceae%20Checklist%20Third%20Edition.pdf
Islam, M.S., Rahman, M.S., Khatun, M., Hajibeigy, M., Uddin, M.N., & Khatun, M.M. (2024).
Extraction of organic pigments from tomato (Solanum lycopersicum L.), turmeric (Curcuma
longa L.) and red amaranth (Amaranthus tricolor L.) for safe use in agroproducts. Heliyon 10(3):
e25278. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2024.e25278
Jadouali, S.M., Bouzoubaâ, Z., Majourhat, K., Mamouni, R., Gharby, S., & Atifi, H. (2017),
November). Polyphenols content, flavonoids and antioxidant activity of petals, stamens, styles
20
Madrigal-Hernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XIX (2025): enero-diciembre, e1802
and whole flower of Crocus sativus of Taliouine. Acta Hortic. 1184: 301-308.
https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2017.1184.43
Jiménez-Sierra, C.L. (2011). Las cactáceas mexicanas y los riesgos que enfrentan. Revista Digital
Universitaria 12(1): 1-23. https://repositorio.unam.mx/contenidos/las-cactaceas-mexicanas-y-los-
riesgos-que-enfrentan-5040758
Kumar, N., & Goel, N. (2019). Phenolic acids: Natural versatile molecules with promising therapeutic
applications. Biotechnology Reports (Amsterdam, Netherlands) 24: e00370.
https://doi.org/10.1016/j.btre.2019.e00370
Lichtenthaler, H.K. (1987). Chlorophylls and carotenoids: pigments of photosynthetic
biomembranes. Methods in Enzymology 148: 350-382. https://doi.org/10.1016/0076-6879(87)48036-1
Malusa, J., Felger, R., Rutman, & Baker, M. (2014). Ajo peak to tinajas altas: A flora in southwestern
Arizona. Part 7. Eudicots: Cactaceae – Cactus Family. Phytoneuron 69: 1-95.
https://www.phytoneuron.net/2014Phytoneuron/69PhytoN-SWArizCacti.pdf
Mamri, S., Daoudi, N.E., Baraich, A., Ouahhoud, S., Khoulati, A., Choukri, M., Asehraou, A.,
Bnouham, M., Jaouadi, B., Abousalham, A., Dabiellil, F., Salamatullah, A.M., & Saalaoui, E.
(2024), Comprehensive analysis of bioactive compounds in Crocus sativus stamens extracts by
HPLC-DAD: investigating antidiabetic activity via in vitro, in vivo, and molecular docking
simulation. Frontiers in Chemistry 12:1419120. https://doi.org/10.3389/fchem.2024.1419120
Márquez-Rangel, I., Cruz, M., Neira-Vielma, A.A., Ramírez-Barrón, S.N., Aguilar-Zarate, P., &
Belmares, R. (2025). Plants from arid zones of Mexico: Bioactive compounds and potential use for
food production. Resources 14(1): 13. https://doi.org/10.3390/resources14010013
Manrique-Reol, E. (2003). Los pigmentos fotosintéticos, algo más que la captación de luz para la
fotosíntesis. Ecosistemas 12(1).
https://www.revistaecosistemas.net/index.php/ecosistemas/article/view/250
Martinez, R.M., Melo, C.P.B., Pinto, I.C., Mendes-Pierotti, S., Vignoli, J.A., Verri, W.A., &
Casagrande, R. (2024). Betalains: a narrative review on pharmacological mechanisms supporting
the nutraceutical potential towards health benefits. Foods 13(23): 3909.
https://doi.org/10.3390/foods13233909
Mohd-Zin, Z., Sanuri, A.Z.M., Bashah, N., Ibrahim, K., Yahya, H., & Zainol, M.K. (2021). Effect of
different extraction solvents on antioxidant properties of water lily (Nymphaeaceae antares) flower
petal and stamen. Food Research 5(3): 359-368. https://doi.org/10.26656/fr.2017.5(3).653
Moreno-Escamilla, J.O., Álvarez-Parrilla, E., De la Rosa, L.A., Núñez-Gastélum, J.A., González-
Aguilar, G.A., & Rodrigo-García, J. (2017). Effect of different elicitors and preharvest day
application on the content of phytochemicals and antioxidant activity of butterhead lettuce
(Lactuca sativa var. Capitata) produced under hydroponic conditions. Journal of Agricultural and
Food Chemistry 65(26): 5244-5254. https://doi.org/10.1021/acs.jafc.7b01702
Nagarajan, J., Wah-Heng, W., Galanakis, C. M., Nagasundara-Ramanan, R., Raghunandan, M.E., &
Sun, J. (2016). Extraction of phytochemicals using hydrotropic solvents. Separation Science and
Technology 51(7): 1151-1165. https://doi.org/10.1080/01496395.2016.1143842
Narbona, E., Buide, M.L., Casimiro-Soriguer, I., & Del Valle, J.C. (2014). Polimorfismos de color
floral: causas e implicaciones evolutivas. Ecosistemas 23(3): 36-47.
https://doi.org/10.7818/ECOS.2014.23-3.06
Ngo, T.V., Scarlett, C.J., Bowyer, M.C., Ngo, P.D., & Vuong, Q.V. (2017). Impact of different
extraction solvents on bioactive compounds and antioxidant capacity from the root of Salacia
chinensis L. Journal of food quality 1(1): 9305047. https://doi.org/10.1155/2017/9305047
21
Madrigal-Hernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XIX (2025): enero-diciembre, e1802
Nortjie, E., Basitere, M., Moyo, D., & Nyamukamba, P. (2022). Extraction methods, quantitative and
qualitative phytochemical screening of medicinal plants for antimicrobial textiles: A
review. Plants (Basel, Switzerland) 11(15): 2011. https://doi.org/10.3390/plants11152011
Ortega-Baes, P., & Godínez-Álvarez, H. (2006). Global diversity and conservation priorities in the
Cactaceae. Biodiversity & Conservation 15: 817-827. https://doi.org/10.1007/s10531-004-1461-x
Pacini, E. (1996). Types and meaning of pollen carbohydrate reserves. Sexual Plant Reproduction 9:
362-366. https://doi.org/10.1007/BF02441957
Ramírez-Rodríguez, Y., Martínez-Huélamo, M., Pedraza-Chaverri, J., Ramírez, V., Martínez-
Tagüeña, N., & Trujillo, J. (2020). Ethnobotanical, nutritional and medicinal properties of Mexican
drylands Cactaceae Fruits: Recent findings and research opportunities. Food Chemistry 312:
126073. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2019.126073
Rangel-Huerta, O.D., Pastor-Villaescusa, B., Aguilera, C.M., & Gil, A. (2015). A systematic review of
the efficacy of bioactive compounds in cardiovascular disease: Phenolic
compounds. Nutrients 7(7): 5177-5216. https://doi.org/10.3390/nu7075177
Reyes-Corral, V. I., González-Fernández, R., Quiñónez-Martínez, M., Rodrigo-García, J., Iván-Garza,
G., & Valero-Galván, J. (2022). Characterization of the morphometry, germination process,
phytochemicals, and antioxidant capacity of seeds of three species of the genus Cylindropuntia
(Cactaceae) of Chihuahua state. Journal of the Professional Association for Cactus Development 24:
251-268. https://doi.org/10.56890/jpacd.v24i.506
Ritchie, R.J. (2008). Universal chlorophyll equations for estimating chlorophylls a, b, c, and d and
total chlorophylls in natural assemblages of photosynthetic organisms using acetone, methanol,
or ethanol solvents. Photosynthetica 46(1): 115-126. https://doi.org/10.1007/s11099-008-0019-7
Santos-Díaz, M. del S., & Camarena-Rangel, N.G. (2019). Cacti for production of metabolites: Current
state and perspectives. Applied Microbiology and Biotechnology 103: 8657-8667.
https://doi.org/10.1007/s00253-019-10125-5
Sinha, D., Mukherjee, S., & Chowdhury, S. (2022). Methods of extraction of phytochemicals. In Singh,
A. (Ed.) Isolation, Characterization, and Therapeutic Applications of Natural Bioactive Compounds IGI
Global. pp. 250-279. http://dx.doi.org/10.4018/978-1-6684-7337-5.ch010
Stintzing, F.C., & Carle, R. (2004). Functional properties of anthocyanins and betalains in plants, food,
and in human nutrition. Trends in Food Science & Technology 15(1): 19-38.
https://doi.org/10.1016/j.tifs.2003.07.004
Sun, D., Wu, S., Li, X., Ge, B., Zhou, C., Yan, X., Ruan, R., & Cheng, P. (2024). The structure, functions
and potential medicinal effects of chlorophylls derived from microalgae. Marine Drugs 22(2): 65.
https://doi.org/10.3390/md22020065
Tamiaki, H., & Kichishima, S. (2025). Chlorophyll pigments and their synthetic analogs. Plant & cell
physiology 66(2): 153-167. https://doi.org/10.1093/pcp/pcae094
Tripathi, S., Singh, S., Mishra, N., & Mishra, N. (2025). The impact of solvent polarity on the phenolic
and antioxidant capacity of green coffee beans (Robusta species) extracts. Nutrition Food Science
13(2). https://bit.ly/3XJs66v
Tungmunnithum, D., Drouet, S., Kabra, A. & Hano, C. (2020). Enrichment in antioxidant flavonoids
of stamen extracts from Nymphaea lotus L. using ultrasonic-assisted extraction and macroporous
resin adsorption. Antioxidants 9(7): 576. https://doi.org/10.3390/antiox9070576
Taylor, L.P., & Hepler, P.K. (1997). Pollen germination and tube growth. Annual review of plant biology
48: 461-491.https://doi.org/10.1146/annurev.arplant.48.1.461
Valero-Galván, J., Garza-Vallejo, G.I., Quiñones-Martínez, M., & González-Fernández, R. (2024).
Seed morphometry and NaCl and sucrose effect on germination rates and phytochemicals in sotol
22
Madrigal-Hernández et.al
TECNOCIENCIA CHIHUAHUA, Vol. XIX (2025): enero-diciembre, e1802
(Dasylirion acrotrichum) from the Chihuahua state, Mexico. Journal of the Professional Association for
Cactus Development 26: 87-106. https://doi.org/10.56890/jpacd.v26i.554
Vicas, S. I., Laslo, V., Pantea, S., & Bandici, G.E. (2010). Chlorophyll and carotenoids pigments from
Mistletoe (Viscum album) leaves using different solvents. Analele Universitatii din Oradea, Fascicula
Biologie, 17(2), 213-218. https://bioresearch.ro/2010-2/213-218%20-%20VICAS%20S.I.%20-
%20U.O.Prot.Med.Ro.%20-%20Chlorophyll%20and%20carotene.pdf
Xiang, J., Yang, C., Beta, T., Liu, S., & Yang, R. (2019). Phenolic profile and antioxidant activity of the
edible tree peony flower and underlying mechanisms of preventive effect on H2O2-induced
oxidative damage in caco-2 cells. Foods 8(10): 471. https://doi.org/10.3390/foods8100471
Yen, G.C., Wu, S.C., & Duh, P.D. (1996). Extraction and identification of antioxidant components
from the leaves of mulberry (Morus alba L.). Journal of agricultural and food chemistry, 44(7): 1687-
1690. https://doi.org/10.1021/jf9503725
Zhang, H., Wang, M., Yu, G., Pu, J., Tian, K., Tang, X., & Deng, Q. (2023). Comparative analysis of
the phenolic contents and antioxidant activities of different parts of two pomegranate (Punica
granatum L.) Cultivars: ‘Tunisia’ and ‘Qingpi’. Frontiers in Plant Science 14: 1265018.
https://doi.org/10.3389/fpls.2023.1265018
2025 TECNOCIENCIA CHIHUAHUA.
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