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• Vol. II, No. 1 • Enero-Abril 2008 •
Creatividad y desarrollo tecnológico
Establecimiento de una plataforma
molecular in vitro para desarrollar
oocitos a partir de células madre
embrionarias
Establishment in vitro of a molecular platform to
develop oocytes from embryonic stem cells
E
DUVIGES
B
URROLA
-B
ARRAZA
1
, V
ERÓNICA
M
ORENO
-B
RITO
2
, I
RENE
L
EAL
-B
ERUMEN
2
, F
ELIPE
A
LONSO
R
ODRÍGUEZ
-A
LMEIDA
1
, E
VERARDO
G
ONZÁLEZ
-R
ODRÍGUEZ
1,3
DOI: https://doi.org/10.54167/tecnociencia.v2i1.67
Resumen
Las células madre embrionarias (CME) son derivadas de la masa
celular interna de blastocitos de mamíferos y debido a su pluripotencia
in vitro e in vivo son capaces de generar los 200 tipos celulares
identificados en el organismo. El uso de medios selectivos
suplementados con determinados factores y la expresión artificial
de genes que regulan vías de diferenciación específicas, ha
permitido dirigir in vitro la diferenciación de las CME hacia tipos
celulares especializados somáticos como células neuronales,
cardiacas, etc. Recientes estudios han demostrado que la
diferenciación espontánea de las CME, también puede dar origen in
vitro a células de tipo germinal que posteriormente se desarrollan
hacia células similares a gametos, como son los espermatozoides y
óvulos. Lo anterior plantea la interesante idea de generar sistemas
in vitro, que permitan dirigir la diferenciación de las CME hacia la
formación in vitro de gametos. El desarrollo de estos sistemas tendrá
un impacto directo en el entendimiento molecular de la programación
genética, que interviene en los procesos de la oogénesis y
espermatogénesis, así como el desarrollo de protocolos más
eficientes para la clonación animal, clonación terapéutica, fertilización
in vitro y transferencia de embriones. En relación a lo anterior,
nuestro grupo de trabajo se ha enfocado al estudio de genes
denominados ¨maestros¨, cuya expresión además de darse en
etapas muy tempranas de la determinación de la línea germinal, está
en relación directa con el correcto desarrollo de las células
germinales en los ovarios y testículos, características que los hace
candidatos a ser utilizados para dirigir la diferenciación de las CME
hacia células de linaje germinal.
Palabras clave: Diferenciación, Células Germinales, Transfección,
Oogénesis.
Abstract
Embryonic stem cells (ESC) are derived from the inner
cell mass of mammalian blastocysts, and because of
their in vitro and in vivo pluripotency they are able to
generate the 200 cell types identified in the body. The
use of selective media and artificial gene expression
that regulate specific routes of differentiation have
allowed direct in vitro differentiation of ESC toward
specialized somatic cell types like neural cells, heart
cells, etc. Recent studies have shown that spontaneous
in vitro differentiation of ESC can also give place to a
type of germ cells which later on could develop into
gametes: sperm and oocytes. This raises the idea of
generating an in vitro system, to allow the differentiation
of ESC toward the formation of gamete cell. This will
have a direct impact on understanding the genetics
programming processes of oogenesis and
spermatogenesis, that could allow the development of
more efficient protocols for animal cloning, therapeutic
cloning, in vitro fertilization and embryo transfer. In
relation to this, our research group has focused on the
study of genes called «masters» that are expressed on
early stages of determining germ line, and have direct
relation to proper development of germ cells in the ovaries
and testicles. So, those are genes that could be
candidates to direct differentiation of ESC toward a germ
cell lineage.
Keywords: Differentiation, Germ Cell, Transfection,
Oogenesis.
__________________________________
1Profesor de la Facultad de Zootecnia, Universidad Autónoma de Chihuahua. Periférico Francisco R. Almada, Km 1 de la carretera
Chihuahua-Cuahtémoc. C.P. 31031. Chihuahua, Chihuahua. México. Teléfono (614)-434-0303
2Profesor de la Facultad de Medicina, Universidad Autónoma de Chihuahua. Ave. Colón No. 1003, Chihuahua, Chih. Tel: (614)-439-18-
46, ext. 3518
3 Dirección electrónica del autor de correspondencia: evegonzal@uach.mx
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ODRÍGUEZ
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Establecimiento de una plataforma molecular in vitro para desarrollar oocitos a partir de células
madre embrionarias
L
Introducción
as células madre embrionarias (CME), son células que han sido aisladas in vitro a
partir de la masa celular interna (MCI) de blastocistos de mamíferos como el ratón
(Evans y Kaufman, 1981), primate (Pau et al., 2004) y humano (Amit et al., 2000).
Debido a que las células de la MCI son las que contribuyen a la formación de todos los
tejidos de un embrión, éstas retienen bajo condiciones muy específicas de cultivo in vitro su
capacidad pluripotencial, ésto es, pueden permanecer en un estado de indiferenciación o
indeterminación celular (Wobus y Boheler, 2005). Estas células pueden ser inducidas a
diferenciarse de manera espontánea cuando son cultivadas en suspensión sobre una
superficie no adherente en ausencia del factor inhibidor de la leucemia, formando así
agregados multicelulares de células diferenciadas denominados cuerpos embroides, los
cuales están compuestos de mezclas de células diferenciadas como neuronas, cardiocitos,
miocitos, entre otras, (Blyszczuk et al., 2003;
Doetschman et al., 1985; Hamazaki et al.,
2001; Wernig et al. 2002).
Uno de los logros más importantes en
el estudio de las CME en los últimos 10 años,
ha sido la posibilidad de inducir y dirigir in
vitro la diferenciación de las CME hacia un
determinado tipo celular especializado, lo
que actualmente está permitiendo en el
campo de la medicina, el desarrollo de
terapias de reemplazo celular así como el
desarrollo de modelos experimentales in vitro
que permiten el estudio, a nivel molecular, de
los procesos que intervienen en la
determinación de una célula especializada.
Diferenciación de la CME in vitro a tipos
celulares especializados.
Distintos grupos de investigación han
desarrollado algunas estrategias para
inducir la diferenciación de las CME hacia
un determinado tipo celular especializado.
Básicamente se han utilizado dos enfoques:
(i) El uso de factores, que son incorporados
al medio de cultivo en el que crecen CME y
que inducen o regulan determinados
programas de diferenciación, como son el
factor de crecimiento de neuritas y el factor
de crecimiento de fibroblastos (NGF y FGF
respectivamente, por sus siglas en inglés)
utilizados como inductores de programas de
diferenciación a neuronas (Lovell-Badge et
al., 2001; Odorico et al., 2001). Y (ii) Mediante
procedimientos de biología molecular, como
la incorporación de un gen al genoma de las
CME, que dispara un estado de
diferenciación específico. Esta estrategia
solo se utiliza cuando se tiene identificado
el gen que define la vía de diferenciación de
interés (Park et al. 2003). Por medio de
estos dos procedimientos, se ha logrado
dirigir la diferenciación de las CME a varios
tipos celulares especializados como células
vasculares (Yamashita et al., 2000), neuronas
que liberan dopamina y serotonina para el
tratamiento de la enfermedad de Parkinson
(Lee et al., 2000), neuronas para la
reparación de lesiones en medula espinal
(Espinosa-Jeffrey et al., 2002; Wiestler et al,
2002; Tang et al., 2002), cardiocitos con
actividad contráctil para el tratamiento de
infarto al miocardio (Doetschman et al.,
1993; Maltsev et al., 1999; Muller et al., 2002)
y células de Langerhans productoras de
insulina para el tratamiento de la diabetes
(Lumelsky et. al., 2001).
El interés que ha generado la capacidad
pluripotente de las CME y su uso potencial
en terapias de reemplazo celular ha dado a
lugar a un importante número de trabajos que
constantemente reportan la generación de
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células especializadas somáticas a partir de
CME. Sin embargo, en el área de la Biología
de la Reproducción Animal, en los últimos 4
años se ha comprobado que la diferenciación
espontánea de las CME in vitro también
puede dar origen a células primordiales
germinales que dan origen a
espermatozoides y óvulos, las cuales son
células no somáticas que poseen la
capacidad biológica de asegurar la
perpetuación de la especie, resguardando,
transfiriendo y diversificando el contenido
genético específico de cada organismo
(Clark et al., 2004; Geijsen et al., 2003;
Hübner et al., 2003, Kerkis et al., 2007;
Lacham y Trounson, 2006; Nayernia et al.,
2006; Toyooka et al., 2003). Estos resultados
plantean la posibilidad del desarrollo de
sistemas que mediante el uso de factores o
de la expresión artificial de genes, nos
permitan inducir los mecanismos moleculares
que especifican la línea germinal como la
oogenésisis y espermatogénesis.
¿Cuál es el impacto y la aplicación de la
generación de óvulos y espermas producidos
en laboratorio a partir de las CME?
Actualmente, se encuentra disponible
bastante información acerca de los
mecanismos genéticos y moleculares que
utilizan las células para dirigir su
diferenciación a un tipo celular especializado
(como los neuronales, las cardiacas, entre
otros). Sin embargo, se conoce poco acerca
de los mecanismos moleculares y celulares
por los cuales las células primordiales
germinales restringen su diferenciación a
gametos. Por lo tanto, el desarrollo de un
sistema in vitro que recapitule los eventos
que especifican la línea germinal, permitirá
el estudio de los mecanismos moleculares,
la identificación de sus genes y de cómo sus
productos proteicos regulan los procesos de
oogenésis y espermatogénesis en humanos
y de animales de interés económico.
En el campo de la reproducción animal,
particularmente el área de mejoramiento
genético de bovinos, el desarrollo de bancos
de esperma no solo ha permitido la
propagación de animales de alta producción
de carne y leche; además, ofrece la
posibilidad de asegurar de forma
permanente el contenido genético de estas
especies a través de la congelación de sus
células germinales. Sin embargo,
actualmente el aporte genético materno solo
es aprovechado en el tiempo en que el
animal es productivo, como es el caso del
ganado vacuno de leche. En base a lo
anterior, la derivación de CME a partir de
embriones de animales bovinos de alto valor
económico y el futuro desarrollo de
protocolos de producción de óvulos bovinos
más eficientes a través de la diferenciación
controlada de las CME por medio de la
expresión artificial de un gen inductor,
podrían permitir la reproducción,
propagación y aseguramiento de la calidad
genética por la vía materna a través de la
derivación in vitro de óvulos.
Por otro lado, una de las tecnologías que
actualmente se están desarrollando
vertiginosamente por el impacto que en un
futuro tendrá en la salud humana y en la
producción animal, es la tecnología de la
clonación; particularmente la clonación
terapéutica. Su procedimiento consiste en
la introducción del núcleo celular de una
célula donadora adulta al interior de un óvulo
enucleado, para generar un embrión del cual
pueden derivar CME genéticamente
compatible al donador. Estas CME
eventualmente pueden ser utilizadas para
terapias de reemplazo celular sin el riesgo
del rechazo. Sin embargo, aunque los
resultados obtenidos en modelos de ratón
son muy alentadores, su aplicación práctica
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en humanos y animales de importancia
económica presenta importantes limitaciones.
Una de ellas es la baja eficiencia con la que
se pueden obtener clones. Actualmente la
tasa de éxito de embriones de ratón clonados
para el estudio de protocolos de terapia
celular es de aproximadamente el 8.2%. Se
ha calculado que serían necesarios 100
óvulos humanos para obtener una sola línea
celular de CME para un individuo. Una
diferencia crucial es que 100 óvulos de ratón
pueden ser obtenidos de pocas hembras
superovuladas. Esta diferencia hace que en
el caso de humanos y bovinos, los óvulos
deben ser colectados de una gran cantidad
de mujeres voluntarias o bovinos hembras
superovuladas. Además de la complejidad del
procedimiento clínico en sí, el costo de la
obtención de óvulos humanos es de 1000 a
2000 dólares; así que para generar una sola
línea de CME humana por clonación
terapéutica se requiere entre 100,000 a
200,000 dólares, una cantidad de recursos
financieros elevados que impiden la
aplicación práctica de esta tecnología
(Mombaerts, 2003). Lo anterior establece
definitivamente la necesidad del desarrollo de
protocolos más eficientes de clonación, ya
sea con fines de producción animal o de
aplicación biomédica y es en este punto en
que la derivación de oocitos in vitro puede
ser una herramienta importante en el
mejoramiento de dichos procesos.
Actualmente, nuestro grupo de
investigación se encuentra trabajando en los
efectos que tiene la expresión artificial del gen
NOBOX en las CME, particularmente en el
encendido de la programación genética que
regula el proceso de diferenciación y
maduración de óvulos, mejor conocido como
la oogénesis, como un medio para evaluar si
la expresión artificial de este gen puede ser
un factor de inducción para la diferenciación
in vitro de las CME a óvulos. Algunas de
las características importantes que lo han
hecho ser un candidato importante, son el
hecho de que codifica para una proteína
nuclear homeobox que es expresada
exclusivamente en el ovario embrionario.
Además, el desarrollo de ratones
¨knockout¨ a los que se les ha eliminado
NOBOX, revela que durante el desarrollo
postnatal (15 días después del nacimiento)
sus ovarios desarrollan una degeneración
en la formación de folículos primarios y
secundarios que culminan con una pérdida
total de formación de óvulos.
Interesantemente, la ausencia del gen
NOBOX, a nivel molecular suprime la
expresión de genes específicos
involucrados en el desarrollo de la línea
germinal como Mos, Oct-4, Rfp14, Fgf8,
Zar1, Dnm1o, Gdf9, Bmp15 y H1oo, así
como que su expresión precede a la de
algunos de los genes más importantes en
la oogénesis temprana como Oct4, Gdf9 y
Rfp14. Estos resultados sugieren que la
expresión de NOBOX se encuentra
estrechamente relacionada con las etapas
muy tempranas del desarrollo folicular y a
nivel molecular regula la expresión
secuencial de genes relacionados con el
proceso de oogénesis, lo que sugiere que
la expresión de NOBOX regula los
primeros pasos de la cascada de señales
moleculares que determinan la línea
germinal que lo catalogan como un gen
¨maestro¨ (Rajkovic et al. 2003), Por tal
motivo, es un excelente gen candidato para
dirigir in vitro la diferenciación de las ESC
hacia células germinales.
Nuestra estrategia general se ha
basado en el aislamiento del gen NOBOX
por la técnica de Transcripción Inversa
acoplada a la Reacción en Cadena de la
Polimerasa (RT-PCR), a partir de RNA total
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de ovario embrionario de ratón y su posterior
clonación en el vector pQBI25 que posee el
gen reportero que codifica para la proteína
verde fluorescente (GFP, por sus siglas en
inglés), con la finalidad de generar proteínas
de fusión GFP-NOBOX. La proteína GFP fue
identificada en la medusa Aqua victoria y
tiene la característica de generar
fluorescencia de manera natural in vivo,
cuando es excitada por la luz a una longitud
de onda de 474 nm, además de no alterar la
función de las proteína que se le ha
fusionado, de tal manera que la ubicación
de la fluorescencia nos indica de manera
indirecta la localización de la proteína
NOBOX. Así lo revela la fluorescencia
emitida y localizada exclusivamente en el
núcleo de las células HeLa, cuando la
secuencia nucleotídica que codifica a la
fusión GFP-NOBOX, es introducida al
interior de estas células por medio de
transfección, donde esta proteína de fusión
Figura 1. Expresión proteica de NOBOX-GFP en células HeLa. Células HeLa transfectadas
çcon el plasmido pQBI25/NOBOX-GFP, fijadas con paraformaldehído al 4% y observadas en microscopio
AxiosCop plus II de fluorescencia con un aumento de 40X. A). Normasky (DIC). B). Fluorescencia, y C).
Normasky-Fluorescencia
es expresada. Localización que es acorde
con las funciones de factor de transcripción
que tiene NOBOX dentro del núcleo celular
(Figura 1).
Mediante la misma técnica de
transfección, hemos introducido y expresado
artificialmente la fusión GFP-NOBOX en las
CME de ratón, con la finalidad de evaluar si
la expresión artificial de este gen tiene la
capacidad de regular la expresión de otros
genes como: Rfpl4, H100, Figla, Bmp15, Mos,
Zar1, Gdf9, Vasa, Mater, Zp1, Zp2, Star y
p450, que a la fecha se han documentado que
intervienen en el proceso de la determinación
de la línea germinal particularmente en la
oogénesis (Castrillon et al., 2000; Lan et al.
2003; Senson et al., 2003; Rajkovic et al,,
2004). Interesantemente, después de 46
horas postransfección, mediante RT-PCR
a partir de RNA total de CME que expresan
artificialmente la fusión GFP-NOBOX,
obtuvimos la amplificación positiva por
medio de los genes Figla, Mos y Star
(Figura 2, carril 3), que de manera natural
se encuentran suprimidos en las CME
indiferenciadas (Figura 2, carril 2) y en las
CME que solo son transfectadas con el gen
GFP el cual no tiene ningún efecto funcional
en estas células (Figura 2, carril 4). A la
fecha, estos resultados nos demuestran la
capacidad real que tiene el gen NOBOX
de participar in vitro en la regulación del
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programa genético que determina la línea
germinal. Sin embargo, es importante
señalar que la expresión negativa para el
resto de los genes puede ser debida a que
la expresión de la fusión GFP-NOBOX en las
CME es de carácter transitorio, esto quiere
decir que después de un plazo de más de
72 horas, las CME inician el proceso de
expulsión del ADN que codifica a la fusión
GFP-NOBOX, lo que no permite evaluar a
Figura 2. Análisis de la expresión de genes que intervienen en la determinación de la línea germinal en
Células Madre Embrionarias transfectadas con el gen NOBOX (46 hrs de transfección).
tiempos más prolongados sus efectos en la
expresión en aquellos genes que
presentaron una amplificación negativa.
Las RT-PCR se realizaron a partir de 1ug
de RNA total utilizando oligonucleótidos
específicos para cada uno de los
marcadores. Carril 1: control positivo de
PCR, ovario de ratón. Carril 2: CME
indiferenciadas. Carril 3: CME
indiferenciadas transfectadas con el gen
NOBOX-GFP. Carril 4: CME indiferenciadas
transfectadas con el gen GFP. Carril 5: control
negativo de PCR.
Las perspectivas futuras de nuestro
diseño, involucran el desarrollo de un
sistema de expresión estable de la fusión
GFP-NOBOX en las CME, a través del uso
de sistemas de recombinación genética
viral como son los sistemas lentivirales, que
nos permita la inserción de nuestra
secuencia de DNA que codifica la fusión
GFP-NOBOX al genoma de las CME, lo que
permitirá su expresión en forma permanente
y así evaluar sus efectos a más largo plazo,
en los genes que intervienen en la
determinación de la línea germinal.
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Literatura citada:
AMIT, M., Carpenter, M.K., Inokuna, M.S., Chiu, C.P., Harris, C.P.,
Waknitz, M.A., Itskovitz-Eldor, J., Thomson, J.A. 2000. Clonally
derived human embryonic stem cell lines maintain pluripotency
and proliferative potential for prolonged periods of culture.
Dev. Biol. 227:271-278
BLYSZEZUK P., Czyz J., Kania G., Wagner M., Roll U., St Onge L.,
Wobus A.M. 2003. Expression of Pax4 in embryonic stem
cells promotes differentiation of nestin-positive progenitor and
insulin producing cells. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 100:998-
1003
CASTRILLON, D. H., Bradley, J. Q., Wang, T. Y.,Quigley, C., and
Crum, Ch. P. 2000. The human VASA gene is specifically
expressed in the germ cell lineage. PNAS 97:9585-9590
CLARK A.T., Bodnar M.S., Fox M., Rodriguez R.T., Abeyta M.J.,
Firpo M.T., Pera R.A. 2004. Spontaneous differentiation of
germ cells from human embryonic stem cells in vitro. Hum.
Mol. Genet. 13 (7):727-739
DOETSCHMAN, T., Eistetter, H., Katz, M., Schmidt, W., Kemler, R.
1985. The in vitro development of blastocyst-derived
embryonic stem cell lines: formation of visceral yolk sac, blood
islands and myocardium. J. Embryol. Exp. Morphol. 87: 27-45
DOETSCHMAN T., Shull M., Kier A., Coffin J.D. 1993. Embryonic stem
cell model systems for vascular morphogenesis and cardiac
disorders. Hypertension. 22(4):618-629
EVANS, M.J., Kaufman,M. H. 1981. Establishment in culture of
pluripotencial cells from mouse embryos. Nature 292: 154-
156
ESPINOSA.Jeffrey A., Becker-Catania S.G., Zhao P.M., Cole R.,
Edmond J., de Vellis J. 2002. Selective specification of CNS
stem cells into oligodendrogial or neuronal cell lineage: cell
culture and transplant studies. J. Neurosci. Res. 69(6):810-
825
GEIJSEN N., Horoschak M., Kim K., Gribnau J., Eggan K., Daley G.
Q. 2003. Derivation of embryonic germ cells and male gametes
from embryonic stem cells. Nature 2003
HATTAN N., Kawaguchi H., Ando K., Kuwabara E., Fujita J., Murata
M., Suematsu M., Mori H., Fukuda K. 2005. Purified
cardiomyocytes from bone marrow mesenchymal stem cells
produce stable intracardiac grafts in mice. Cardiovasc. Res.
65(2):334-344
HAMAZAKI, T., Iiboshi, Y., Oka, M., Papst, P.J., Meacham, A.M.,
ZonLI., Terada, N. 2001. Hepatic maturation in differentiating
embryonic stem cells in vitro. FEBS Letl 497: 15-19
HÜBNER K., Fuhrmann G., Christenson L.K., Kheler J., Reinbold
R., De la FR., Wood J., Strauss III J.F., Boiani M., Schöler H.R.
2003. Derivation of oocytes from mouese embryonic stem
cells. Science 300:1251-1256
KERKIS A., Fonseca S., Serafin R.C., Lavagnolli T., Abdelmassih
S., Abdelmassih R., Kerkis I. 2007. In vitro differentiation of
male mouse embryonic stem cells into both presumtive sperm
cells and oocytes. Cloning Stem Cells 9(4):535-548
LACHAM-KAPLAN O., Trounson A. 2006. Testicular cell conditioned
medium supports differentiation of embryonic stem cells into
ovarian structure containing oocytes. Stem cells 24:266-273
LAN, Z., Gu, P., Xu, X., Jackson, K. J., De Mayo, F. J., O´Malley, B.
W. O., and Cooney, A. J. 2003. GCNF-dependent repression
of BMP-15 and GDF-19 mediates gamete regulation of female
fertility. The EMBO Journal 22:4070-4081
LEE S.H., Lumelsky N., Studer L., Auerbach J. M., McKay R.D.
2000. Eficiente generation of midbrain and hindbrain neurons
from mouse embryonic stem cells. 18(6):675-679
LEON-QUINTO T., Jones J., Skoudy A., Burcin M., Soria B. 2004. In
vitro directed differentiation of mouse embryonic stem cells
into insulin-producing cells. Diabetologia 47:1442-1451
LOVELL-Badge, R. 2001. The future for stem cell research. Nature
414(6859):88-91
Lumelsky N., Blondel O., Laeng P., Velasco I., Ravin R., Mckay R.
2001. Differentiation of embryonic stem cells to insulin-secreting
structures similar to pancreatic islets. Sicence 292:1389-1394
MALTSEV V.A., Ji G.J., Wobus A.M., Flesischmann B.K., Hescheler
J. 1999. Establishment of beta-adrenergic modulation of L-
type Ca2+ current in the early stages of cardiomyocyte
development. Circ. Res. 84:136-145
MOMBAETS, P. 2003Therapeutic cloning in the mouse. Proc. Natl.
Acad. Sci. USA. 100: 11924-11925
MULLER M., Fleischmann B.K., Selbert S., Ji G.J. Endl E., Middeler
G., Muller O.J. Schelenke P., Frese S., Wobus A.M., Hescheler
J., Katus H.A., Franz WM. 2000. Selection of ventricular-like
cardiomyocytes fros ES cells in vitro. FASEB J. 14:2540-2548
NAYERNIA K., Nolte J., Michelmann H.W., Lee J.H., Rathsack K.,
Drusenheimer N., Dev A., Wulf G., Ehermann I.E., Elliott D.J.,
Okpanyi V., Zechner U., Haaf T., Meinhardt A., Engel W. 2006.
In vitro-differentiated embryonic stem cells give rise to male
gametes that can generate offspring mice. Dev. Cell. 11(1):125-
132
ODORICO J. S., Kaufman D.S., Thomson J.A. 2001. Multilineage
differentiation from human embryonic stem cell lines. Stem Cells
19(3):193-204
PARK, S., Kim, E.Y., Ghil, G.S., Joo, W. S., Wang, K. C., Kim, Y.S.,
Lee, Y.S., Lee, Y. J., Lim, J. 2003. Genetically modified human
embryonic stem cells relieve symptomatic motor behavior in a
rat model of Parkinson´s disease. Neurosci. Lett. 325:91-9
PAU, K.Y., Wolf, D.P. 2004. Derivation and characterization of
monkey embryonic stem cells. Reprod. Biol. Endocrinol. 2: 41
RAJKOVIC, A., Pangas, S. A., Ballow, D., Suzumori, N., and Matzuk,
M. M. 2004. Nobox deficiency disrupts early folliculogenesis
and oocyte specific gene expression. Science 305:11571159
SENBON, S., Hirao, Y., and Miyano, T. 2003. Interactions between
the oocyte and surrounding somatic cells in follicular
development: lessons from in vitro culture. J. Reprod. Dev.
49:259-269
TANG F., Shang K., Wang X., Gu J. 2002. Differentiation of
embryonic stem cell to astrocytes visualized by green
fluorescent protein. Cell Mol. Neurobiol. 22:95-101
TOYOOKA Y., Tsunekawa N., Akasu R., Noce T. 2003. Embryonic
stem cells can form germ cells in vitro. Proc. Natl. Acad. Sci.
USA 100: 11457-11462
WIESTLER O.D., Barde Y.A., Brüstle O. 2002. Tau EGFP embryonic
stem cells: an efficient tool for neuronal lineage selection and
transplantation. J. Neurosci. Res. 69:918-924
WOBUS, A.M., Boheler, K. R. 2005. Embryonic stem cells: Prospects
for developmental biology and cell therapy. Physiol. Rev. 85:635-
678
YAMASHITA J., Itoh H., Hirashima M., Ogawa M., Nishikawa S.,
Yurugi T., Naito M., Nakao K., Nishikawa S. 2000. Flk1-positive
cells derived from embryonic stem cells serve as vascular
progenitors. 408(6808):92-96
Este artículo es citado así:
Burrola-Barraza E. , V. Moreno-Brito, I. Leal-Berumen, F. A. Rodríguez-Almeida, E. González-Rodríguez.2008. Establecimiento de una
plataforma molecular in vitro para desarrollar oocitos a partir de células madre embrionarias. TECNOCIENCIA Chihuahua 2(1)56-
62.:
